C-реактивный белок
28.06.2020

Микоплазмоз животных. Микоплазмозные маститы крупного рогатого скота Микоплазмозные артриты телят

1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУЫ.

1.1. Этиологические аспекты ассоциативного урогенитального микоплазмоза крупного рогатого скота.

1.2. Методы индикации и идентификации микоплазм.

1.2.1 .Питательные среды для культивирования микоплазм.

1.2.2. Серологические и иммунологические методы диагностики микоплазмоза.

1.3.Чувствительность микоплазм к химиотерапевтическим препаратам и лечение больных микоплазмозом.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», 16.00.03 шифр ВАК

  • Диагностика и лечение телят при микоплазмоз-ассоциированной инфекции 2007 год, кандидат ветеринарных наук Свиридова, Анна Николаевна

  • Этио-эпизоотологические особенности микоплазмоза свиней и усовершенствование методов его диагностики и лечения 2008 год, кандидат ветеринарных наук Жонголович, Анна Евгеньевна

  • Усовершенствование лабораторной диагностики ассоциативного респираторного микоплазмоза птиц 2004 год, кандидат ветеринарных наук Сунцова, Ольга Александровна

  • Коксиеллез-ассоциированная инфекция крупного рогатого скота и усовершенствование лабораторных методов ее диагностики 2009 год, кандидат ветеринарных наук Наконечный, Олег Игоревич

  • Экспресс-методы диагностики ассоциативного урогенитального микоплазмоза плотоядных 2002 год, кандидат ветеринарных наук Новикова, Наталья Николаевна

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ассоциативный урогенитальный микоплазмоз крупного рогатого скота: диагностика и лечение»

Актуальность темы. В последние годы возросло значение в возникновении заболеваний условнопатогенных микроорганизмов, в том числе микоплазм. Микоплазмоз является типичной хронической инфекцией с присущей ей длительной персистенцией возбудителя в организме. При этом микоплазмы способны сохранять жизнеспособность в фагоцитах и оказывать повреждающие действие на макрофаги, что приводит к нарушению их функции и снижению резистентности организма. Вступая в синергические отношения с вирусной, бактериальной и условно-патогенной микрофлорой, микоплазмы создают условия для ее активного роста и развития, что усиливает тяжесть течения данного заболевания. (С.В. Прозоровский и др., 1997) Все это приводит к снижению продуктивности, бесплодию и яловости коров. Данная инфекционная болезнь наносит хозяйствам значительный экономический ущерб. Поэтому, следует проводить своевременную диагностику микоплазмоза в ассоциации с сопутствующими микроорганизмами с использованием экспресс-методов, что позволит выявлять больных животных, а также микробоносителей и своевременно лечить их.

В настоящее время для лабораторной диагностики микоплазмозов применяют бактериологический и серологический методы: посевы на питательные среды, реакцию непрямой гемагглютинации; реакцию агре-гат-гемагглютинации (РАГА); реакцию пассивной гемагглютинации (РПГА), реакцию иммунофлюоресценции (РИФ); моноклональные антитела (МАТ), поликлональные антитела (ПАТ); твердофазный иммуно-ферментный анализ (ТИФА); радиоиммунологический анализ (РИА); хемиолюминесцентный анализ (ХЛИА); полимеразную цепную реакцию (ПЦР). (А.С.Серебряков, Г.А. Трошева, В.А. Шубин, 1970; П.М. Митрофанов и др., 1982; Ю.В. Вульфович и др., 1995; JI. Н. Новикова и др., 1998). Для постановки серологических реакций необходимо иметь набор активных и специфичных сывороток и антигенов.

Для лечения больных микоплазмозом людей, животных и птиц применяют различные антибиотики. Однако бессистемное применение их без определения чувствительности возбудителей инфекционных болезней при ассоциативном микоплазмозе к лекарственным препаратам не позволяет добиться желаемых результатов. В настоящее время не разработаны эффективные и рациональные схемы лечения крупного рогатого скота при урогенитальном микоплазмозе и ассоциативных формах его проявления.

В связи с этим весьма актуальным является: выяснить распространение урогенитального миоплазмоза крупного рогатого скота с помощью экспресс-методов диагностики, а также разработать эффективные и рациональные схемы лечения крупного рогатого скота при ассоциативном урогенитальном микоплазмозе с учетом всех сочленов ассоциаций микроорганизмов, участвующих в инфекционном процессе. Все это предопределило тему данных исследований.

Цель работы: Разработка методов диагностики и лечения при ассоциативном урогенитальном микоплазмозе крупного рогатого скота. Задачи исследований:

Выяснить эпизоотическую ситуацию по урогенитальному ми-коплазмозу крупного рогатого скота и ассоциативным формам его проявления в хозяйствах Омской области.

Изучить культуральные, морфологические, биохимические и патогенные свойства выделенных микоплазм.

Изыскать экспресс-методы диагностики урогенитального ми-коплазмоза и испытать их в производственных условиях

Разработать эффективные и рациональные схемы лечения коров при урогенитальном микоплазмозе и его ассоциации с другими инфекциями.

Научная новизна. Установлено широкое распространение уроге-нитального микоплазмоза крупного рогатого скота, проявляющегося чаще в ассоциативных формах, в хозяйствах Омской области. Доказана чувствительность элективных питательных сред для индикации глюко-зо- и аргинин ферментирующих микоплазм и уреаплазм крупного рогатого скота. Определены виды и основные свойства выделенных микоплазм. Получены антигены из полевых штаммов микоплазм и сыворотки для РНИФ. Предложены методы и способы индикации и идентификации возбудителей, основанные на комплексном подходе к изучению всех сочленов микробных ассоциаций. Они легко выполнимы в производственных и лабораторных условиях, могут быть использованы для определения видовых характеристик выделяемых культур микроорганизмов. Изучена чувствительность к антибиотикам полевых культур микоплазм, на основании чего разработаны эффективные и рациональные схемы лечения.

Теоретическая и практическая значимость работы.

На основании проведенных исследований разработаны для внедрения в практику методические рекомендации «Комплексная система мер борьбы и профилактики с ассоциативными инфекционными болезнями животных» и «Диагностика и лечение при ассоциативном урогени-тальном микоплазмозе крупного рогатого скота», которые позволят ветеринарным специалистам своевременно диагностировать урогениталь-ный микоплазмоз крупного рогатого скота и его ассоциативные формы. Применение испытанных при ассоциативном микоплазмозе крупного рогатого скота схем лечения позволит наиболее эффективно бороться с данной инфекцией.

Апробация работы. Материалы исследований доложены и обсуждены на научных конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантов ИВМ ФГОУВПО ОмГАУ 2004, 2005, 2006 гг. «Проблемы ветеринарного образования и научных исследований в агропромышленном комплексе» (Омск, 2004, 2005, 2006); Межрегиональной научно-практической конференции «Эпизоотология, патология и ветери-нарно-санитарные мероприятия при инфекционных болезнях животных» (Омск, 2004, СО РАСХН ВНИИБТЖ); Межрегиональной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины» (Омск, 2005, 2006, СО РАСХН ВНИИБТЖ); Международной научно-практической конференции «Профилактика, диагностика и лечение инфекционных болезней, общих для людей и животных» (Ульяновск, 2006г); Международной научно-практической конференции посвященной 60-ти летию Краснодарского НИВИ (Краснодар, 2006).

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 10 печатных работ.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 122 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, практических предложений и приложения. Список использованной ли

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Вологодская, Ольга Владимировна

1. Урогенитальный микоплазмоз крупного рогатого скота широко распространен в хозяйствах Омской области, при этом в виде моноинфекции данная болезнь проявляется лишь в 16% хозяйств, а в остальных (84%) инфекционный процесс носит ассоциативный характер.

2. Жидкие и плотные питательные среды НИИПОИ Роспотребнад-зора г.Омска чуствительны к микоплазмам урогенитального тракта крупного рогатого скота, и позволяют не только выделять их, но и дифференцировать по основным биохимическим показателям (аргинин, глюкоза, мочевина).

3. Микоплазмы выделенные от крупного рогатого скота в Омской области по биохимическим свойствам отнесены к трем видам: М. bovoculi, М. arginini и Ureaplasma sp.

4. Полученные из полевых штаммов микоплазм антигены и аналогичные кроличьи антимикоплазмозные сыворотки активны и специфичны в РНИФ, а данная реакция не уступает по чувствительности бактериологическому методу.

5. Сконструирован стойкий, специфичный и активный эритроцитар-ный диагностикум из трех видов микоплазм, циркулирующих в стадах крупного рогатого скота, для постановки РНГА, позволяющий проводить массовые исследования сыворотки крови животных на микоплазмоз.

6. Выделенные полевые культуры микоплазм и уреаплазм наиболее чувствительны к препаратам фторхинолонового ряда норфлокса-цину и ципрофлоксацину, а также к тетрациклину и левомицети-ну.

7. При ассоциативном урогенитальном микоплазмозе наиболее эффективными и рациональными являются следующие схемы лечения: окситоцин+бициллин-3+ихглюковит+тетрациклин ПВП; ле-вотетрасульфин ПЭГ; окситоцин + бициллин-3 + пункция по Логвинову + левоэритроциклин ПЭГ. Экономический эффект от их применения в хозяйстве составил 550056 руб.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Ветеринарной практике предложены эффективные и рациональные схемы диагностики и лечения крупного рогатого скота при ассоциативном урогенитальном микоплазмозе, которые подробно изложены в методических рекомендациях: «Комплексная система мер борьбы и профилактики при ассоциативных инфекционных болезнях животных» (Утверждены Ученым советом ИВМ ФГОУ ВПО ОмГАУ, протокол № 1 от 29.09.2004 г. и секцией животноводства Центра научного обеспечения АПК Министерства сельского хозяйства и продовольствия Омской области от 08.10.2004 г., протокол № 5) и «Диагностика и лечение при ассоциативном урогенитальном микоплазмозе крупного рогатого скота» (Утверждены Ученым советом ИВМ ФГОУ ВПО ОмГАУ, протокол № 7 от 28.06.2006 г. и секцией животноводства Центра научного обеспечения АПК Министерства сельского хозяйства и продовольствия Омской области от 12.09.2006 г., протокол № 5).

Результаты исследований по диагностике и лечению используются в учебном процессе на кафедре эпизоотологии и инфекционных болезней ИВМ ОмГАУ, на кафедре микробиологии, вирусологии и иммунологии ОмГМА и в Тюменском институте подготовки кадров агробизнеса.

1.4. Заключение

Таким образом, из приведенного обзора литературы следует, что урогенитальный микоплазмоз широко распространен в природе и является важным этиологическим фактором в патологии урогенитального тракта крупного рогатого скота.

Микоплазмоз является типичной хронической инфекцией с присущей ей длительной персистенцией возбудителя в организме. При этом микоплазмы способны сохранять жизнеспособность в фагоцитах и оказывать повреждающие действие на макрофаги, что приводит к нарушению их функции и снижению резистентности организма. Микоплазмы вступают в синергические отношения с вирусной, бактериальной и условно-патогенной микрофлорой, создавая условия для ее активного роста и развития, что усиливает тяжесть течения данного заболевания. Все это приводит к снижению продуктивности, бесплодию и яловости коров. Поэтому, принимая во внимание и учитывая патогенез болезни следует проводить своевременную диагностику микоплазмоза в ассоциации с сопутствующими микроорганизмами, что позволит выявлять больных животных и своевременно лечить их.

Анализ данных отечественной и зарубежной литературы, в отношении различных методик индикации и идентификации возбудителя из первичного материала, показывает, что в основном современная диагностика микоплазмоза основывается на иммунологических и бактериологических методах. Выделенный материал культивируют на специальных питательных средах для роста микоплазм, и подвергают дальнейшим исследованиям с помощью серологических, иммунологических и генетических методов.

Способность микоплазм к длительному персистированию в инфицированном организме никак не проявляя своего присутствия в нем, требует высоко чувствительных и специфичных методов для своевременной постановки диагноза. Современные подходы к исследованию проблемы позволяют наиболее точно и в короткие сроки не только выделить возбудителя, но и отдифференцировать его от других видов микроорганизмов.

Различная активность химиотерапевтических препаратов, способность микроорганизмов приобретать лекарственную устойчивость к антибиотикам, появление новых препаратов создают необходимость контроля чувствительности микоплазм к антибактериальным препаратам, как единственный способ для выбора более эффективных.

В связи с изложенным выше, на данном этапе весьма актуальным остается вопрос о разработке рациональных схем диагностики и лечения ассоциативного урогенитального микоплазмоза крупного рогатого скота с учетом всех сочленов ассоциации микроорганизмов.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1. Материалы и методы

Тема диссертационной работы является самостоятельным разделом комплексной государственной программы «Профилактика (диагностика) и меры борьбы с ассоциативными инфекционными и инвазионными болезнями животных и птиц» (№ гос. регистрации 01.2.001100602).

Научно-исследовательская работа проводилась в лаборатории микстинфекций кафедры эпизоотологии и инфекционных болезней ИВМ ОмГАУ и хозяйствах Омской области.

Объектом исследований являлись коровы родильно - профилак-торного периода с выраженными клиническими признаками абортов, эндометритов и маститов, а также быки-производители.

Использовали эпизоотологические, клинические, патологоанато-мические и лабораторные методы диагностики инфекционных болезней животных.

Материалом для исследований служили сыворотка крови, молоко (молозиво), цервико-вагинальный секрет от 790 коров и нетелей из 34 хозяйств Омской области с различной эпизоотической ситуацией по инфекционным болезням, рождаемостью и гибелью телят, а также сперма и препуциальные смывы от быков и патологический материал от абортированных плодов.

Индикацию и идентификацию возбудителей осуществляли микроскопическими методами, включающими и электронную микроскопию, а также бактериологическими и серологическими методами.

Мазки окрашивали по Граму и Романовскому-Гимзе.

Электоронно-микроскопическое исследование взвеси микоплаз-мозных культур осуществляли путем просмотра ультратонких срезов в электронном микроскопе ЭМ - 125.

Для бактериологического исследования использовали стандартные (МПА, МПБ) и, разработанные совместно с ФГУ Омского НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора, жидкие и плотные питательные среды для индикации и идентификации микоплазм. Специфичность и чувствительность которых была изучена ранее в лаборатории микст-инфекций кафедры эпизоотологии ИВМ ОмГАУ и лаборатории зоонозных инфекций Омского НИИ природно-очаговых инфекций при микоплазмозе плотоядных Новиковой Н.Н. (2002) и респираторном микоплазмозе птиц Сунцовой О.А. (2004). При этом морфологические, тинкториальные, культуральные и биохимические свойства выделенных микроорганизмов изучали согласно общепринятым в бактериологической практике методикам. Микроскопирование проводили при помощи светового микроскопа «Ломо» (х 900). Для видовой индикации микоплазм использовали ключ Gourlay and Howard (1979).

Применяли стандартные и дополнительные, разработанные нами методы серологической диагностики реакцию непрямой иммунофлюо-ресценции (РНИФ) для прижизненного и посмертного выявления антигенов и антител, а также реакцию непрямой гемагглютинации (РНГА) для обнаружения антител в сыворотке крови животных. Фиксацию мазков проводили по методу Моди с соавт. (1958), а постановку РНИФ по методике, предложенной Уэллером и Кунсом (1945). В качестве антигенов применяли: полученные нами микоплазмозные антигены, антигены вакцинных штаммов и стандартные антигены, используемые для постановки РА и РСК, а в качестве антител - гомологичные антигенам кроличьи и бычьи антисыворотки, антивидовые для РНИФ и специфические сальмонеллезные, риккетсиозные, листериозные для РПИФ люминесцентные сыворотки меченные ФИТЦ (ИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи), а также полученные нами кроличьи сыворотки против микоплазмоза, хламидиоза, ИРТ-ПВ, диплококкоза, стафилококкоза, стрептококкоза). Видоспецифические сыворотки к полевым штаммам микоплазм получали путем гипериммунизации кроликов по схеме D.Schimmel в модиф-фикации Красикова А.П. и Новиковой Н.Н. (2000). Пробы, обработанные люминесцентными сыворотками, просматривали под микроскопом ЛЮМ Р-8 при увеличении в 900 раз. Степень флуоресценции антител оценивали по 4-х крестной системе (Вайтекер и др., 1958).

В качестве клеточной основы для приготовления диагностикума для РНГА были выбраны эритроциты барана, а для стабилизации 20% формальдегид. Фиксацию эритроцитов проводили по методу Фили в модификации Красикова А.Щ2002).

Исследования проводили с целью выявления антигенов возбудителей и вырабатываемых гомологичных специфических антител в сыворотке крови, вымени и половой системе, а также в патологическом материале на 11 инфекционных болезней: микоплазмоз, сальмонеллез, пас-тереллез, хламидиоз, инфекционный ринотрахеит - пустулезный вуль-вовагинит (ИРТ-ПВ), ку-лихорадку, лептоспироз, листериоз, диплокок-коз, стрептококкоз и стафилококкоз.

Экономическую эффективность рассчитывали по методике определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий, утвержденной Департаментом ветеринариии ветеринарии РФ 21.02.1997 г.

Статистическую обработку полученных данных проводили на ПК с помощью программы Microsoft Excel 2000.

2.2. Изучение эпизоотической ситуации по урогенитальному микоилазмозу крупного рогатого скота и ассоциативным формам его проявления в хозяйствах Омской области

Работа проводилась в лаборатории микстинфекций кафедры эпизоотологии и инфекционных болезней ИВМ Ом ГАУ и хозяйствах Омской области.

Для изучения эпизоотической ситуации по урогенитальному ми-коплазмозу крупного рогатого скота и его ассоциативным формам были проведены комплексные обследования хозяйств с применением эпизо-отологического, клинического, бактериологического и серологических методов (РНИФ И РИГА). Для лабораторных исследований брали цер-вико-вагинальную слизь, молоко и сыворотку крови коров родильно-профилакторного периода; препуциальные смывы, сперму и сыворотку крови быков-производителей; патологический материал от абортированных плодов.

На основании полученных результатов установлено, что уроге-нитальный микоплазмоз крупного рогатого скота широко распространен в Омской области (табл. 2.2.1.) Из 34 обследованных хозяйств микоплазмоз отсутствовал только в трех, при этом в виде моноинфекции данная болезнь проявлялась лишь в 16% хозяйств, а в остальных инфекционный процесс носил ассоциативный характер.

Так, наиболее насыщенный микробный пейзаж имел место в к-зе «Россия» Любинского райнона, там выделяли в тех или иных сочетаниях возбудителей микоплазмоза и 10-ти сопутствующих инфекций, притом, что микоплазмы присутствовали у всех обследованных животных. В другом хозяйстве этого же района - ЗАО им. «Розы Люксембург» микоплазмы выделяли у 75% коров и телок, при этом ассоциации микоплазм с возбудителями ИРТ-ПВ, хламидиоза, ку-лихорадки (риккетсиоза) встречались в 20% случаев, ИРТ-ГТВ и хламидиоза в 10%; ми-коплазмоз в виде моноинфекции встречался только у 10% животных.

Высокий процент пораженных микоплазмами животных отмечали в хозяйствах Кормиловского района. Так, в ЗАО «Знамя» и ООО «Молзавод Кормиловский» микоплазмы выявляли у 100% обследованных коров, в хозяйстве Агрофирма «Кормиловская» у 90%, в ООО «Со-сновское» и «Ачаирский-1» по 80%. В других хозяйствах: ЗАО «Русский хлеб», к-з им. Карбышева, СПК «Ермолаевское», ЗАО «Алексеевское» поражено микоплазмами было меньшее количество животных - от 20 до 60%. В виде моноинфекции микоплазмоз присутствовал только в одном хозяйстве - ЗАО «Русский хлеб», в остальных же хозяйствах наблюдались всевозможные ассоциации микоплазм с сальмонеллами, хламидия-ми, листериями, лептоспирами, риккетсиями, вирусом ИРТ-ПВ и кокками. Так, в колхозе им. «Карбышева» у животных обнаружены ассоциации микоплазм с хламидиями в 60% и с риккетсиями в 10% случаев.

В ОПХ «Боевое» Иссилькульского района наряду с микоплазмами выделяли у 30% животных хламидии, у 10% - вирус ИРТ-ПВ сальмонеллы и кокки, у 5 % лептоспиры и риккетсии. У обследованных животных ЗАО «Лесное» и СПК «Украинский» микоплазмы присутствовали в 40% проб исследуемого материала, при этом в первом хозяйстве микоплазмоз проявлял себя в виде моноинфекции, а во втором носил ассоциативный характер.

Наиболее пестрый микробный пейзаж имел урогенитальный тракт у животных из хозяйств: 1) «Новороссийское», 2) «Заря свободы», 3) «Новорождественское», 4) «Нива», 5) «Цветочное». При этом в первом хозяйстве вместе с микоплазмами выделяли в 20% случаев хламидии, лептоспиры и листерии, и в 10% вирус ИРТ-ПВ, сальмонеллы и риккетсии. Во втором хозяйстве у 10% коров выявляли ассоциативную форму проявления микоплазмоза с сальмонеллезом и хламидиозом одновременно и при этом присутствовали практически все исследуемые инфекции, а в третьем - наряду с микоплазмами, хламидиями, вирусом ИРТ-ПВ добавились в различных сочетаниях: риккетсии, лептоспиры, пасте-реллы, диплококки, стрептококки и стафилококки. В четвертом хозяйстве вместе с микоплазмозом у одних и тех же животных в 10% случаев регистрировали хламидиоз, пастереллез, стрептококкоз. В пятом хозяйстве выделяли у 10% животных из маточно-влагалищного секрета одновременно с микоплазмами следующие ассоциации микроорганизмов: вирус ИРТ-ПВ + лептоспиры + хламидии+ стрептококки. В хозяйстве «Новоазовское» в 20% регистрировали микоплазмоз с ИРТ-ПВ и в 5% случаев в различных сочетаниях с ИРТ-ПВ, диплококкозом, ку-лихорадкой и хламидиозом. В ЗАО «Кам-Курское» у 30% коров обнаружена хламидиозно- микоплазмозная инфекция, у 8% микоплазмо-хламидиозно-сальмонеллезная инфекция, у 4% - микоплазмо-хламидиозно-диплококковая и микоплазмо-хламидиозносальмонеллезно- ИРТ-ПВ инфекции. В ЗАО «Дружба» в микропарази-тоценозе урогенитального тракта также были обнаружены ассоциации микоплазм с хламидиями у 40% и с вирусом ИРТ-ПВ у 10% коров и нетелей. В чистом виде микоплазмоз регистрировали в хозяйствах: «Колос», «Чистовское», «Рогозинское», а в «Любимовское», «Руспол» и «Береговое» отмечали ассоциации только с хламидиозом.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Вологодская, Ольга Владимировна, 2006 год

1. Астапова, А.А. Микоплазменные инфекции / А.А. Астапова, Э.А. Мельникова, А.А. Зборовская // Медицинские новости. 2000. - №7. -С. 26-30.

2. Андреев, Е.В. Смешанная вирусомикоплазменная инфекция / Е.В. Андреев, П.П. Фукс // Ветеринария. 1980. - №8. - С. 30 -32.

3. Афонасьев, В.Н. Локализация видовых антигенов в микоплазмах / В.Н. Афонасьев // Новое в инфекционной патологии сельскохозяйственных животных: тр. ВИЭВ. М., 1983. - Т. 58. - С. 73 -75.

4. Афонасьев, В.Н. Методы получения гипериммунных сывороток к микоплазмам / В.Н. Афонасьев // Новое в инфекционной патологии сельскохозяйственных животных: тр. ВИЭВ. М., 1980. - Т. 51. - С. 54-58.

5. Белоусова, Е.В. Сравнительная оценка эффективности методов выявления возбудителей урогенитальных микоплазм: автореф. дис.канд. мед. наук:03.00.07. / Е.В. Белоусова; С.-Петерб. Гос. мед. акад. им И.И. Мечникова.-СПб., 1999.-С. 16.

6. Бердник, В.П. РДСК в микрообъеме при микоплазмозе свиней / В.П. Бердник // Ветеринария. 1986. №1. - С. 23 - 27.

7. Бердник, В.П. Получение мутантов микоплазм и ахолеплазм для изготовления вакцины против инфекционной пневмонии свиней / В.П.Бердник, В.Д. Настенко //Проблемы ветеринарной иммунологии. -М., 1985.-С. 118-121.

8. Борхсениус, С. Н. Микоплазмозы / С. Н. Борхсениус, О. А. Чернова; -Л.: Наука. 1989. - С.37-41.

9. Выявление тетрациклин и эритромицин устойчивых штаммов урогенитальных микоплазм с помощью ПЦР / С.В. Соловьева и др. // ЖМЭИ. - 1998. - №6 - С 3- 7.

10. Гамзаев, Ф. Ш. Сравнительная характеристика диагностических методов для идентификации микоплазменной инфекции урогенитально-го тракта / Ф.Ш. Гамзаев, A.M. Ли //Актуальные проблемы внутренней медицины и стоматологии: сб. науч. тр. СПб, 1997. - С. 184.

11. Гамзаев, Ф.Ш. Особенности диагностики, патогенеза и лечения микоплазменной инфекции урогенитального тракта мужчин: автореф. дис. . канд. мед. наук: 14. 00. 11. / Ф.Ш. Гамзаев; Кубан. Гос. мед. акад. М., 1999.- 18 с.

12. Гасанова, Т. А. Лабораторная диагностика инфекций передающихся половым путем при хронических воспалительных заболеваниях репродуктивной системы / Т. А. Гасанова // ЖМЭИ. 2001. - № 3. - С. 60-65.

13. Гюрджи-Оглы, С.Ж. Фторхинолоны новые синтетические препараты / С.Ж. Гюрджи-Оглы, И.М. Самородов, М.И. Рабинович // БИО. -2004. - №4.-С.5-8.

14. Дададжанов, Ю.Х. Модифицированный метод постановки связывания комплемента при микоплазмозах / Ю.Х. Дададжанов, В.А. Бурлаков //Проблемы лейкоза и инфекционных заболеваний с/х животных. -М., 1988. С. 125- 128.

15. Дерябин, Д.Г. Смешанные урогенитальные инфекции у мужчин / Д.Г. Дерябин, С.Д. Борисов, С.В. Михайленко // ЖМЭИ. 2000. - № 2. -С. 15-18.

16. Ежов, В.И. Изучение чувствительности птичьих микоплазм к антибиотикам и другим химиотерапевтическим препаратам / В.И. Ежов, Г.А. Трошева, Б.М. Савич // Бюллетень ВИЭВ. М., 1972. - Вып. 12. -С. 110.

17. Идентификация Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum и Chlamydia trachomatis методом полимеразной цепной реакции / М.Ю. Бродский и др. // Бюллетень Экспериментальной Биологии и медицины. 1995. - №12. - С. 606 - 609.

18. Использование метода полимеразной цепной реакции in situ для выявления внутриклеточной локализации М. Hominis в культивируемых клетках Hela / К.Т. Момыналиев и др. // Цитология. 2000. - №2. -С. 202-208.

19. Киприч, В.В. Иммунобиологические реакции при микоплазмозе птиц / В.В.Киприч // Болезни птиц: сб. тр. JI.: Колос, 1971. - Вып. 7(18). -С. 208-213.

20. Киприч, В.В. Реакция задержки гемагглютинации и ее диагностическое значение при респираторном микоплазмозе птицы / В.В.Киприч // Ветеринария: сб. тр. Киев: Ураджай, 1973. - Вып. 34 - С. 53 - 56.

21. Климов, А.А. Повышение эффективности фторхинолонов в индустриальном животноводстве / А.А. Климов // Ветеринария. 2003. -№5.-С.53-56.

22. Коваленко, Я. Р. Использование тилана и антибиотиков тетрацикли-нового ряда при лечении массовых пневмоний телят в крупных откормочных хозяйствах / Я. Р. Коваленко, Э. А. Шегидович, И. А. Яблонская//Бюл. ВИЭВ. М.,1973.- Вып. 16.-С. 33-36.

23. Коваленко, Я.Р. Микоплазмы и микоплазмозы животных / Я.Р. Коваленко, М. А. Сидоров // Бюллетень ВИЭВ. М.,1980. - Вып. 38. - С. 5-13.

24. Комелединова, Н.Н. Изучение антигенного состава микоплазм методом иммуноэлектрофореза/ Н.Н. Комелединова, JI.C. Колабская, J1.A. Шорникова // Бюлллетень ВИЭВ. 1972. - №13. - С. 105.

25. Красиков, А.П. Ассоциативный респираторный микоплазмоз птиц / А.П. Красиков, Н.В. Рудаков, О.А. Сунцова // Актуальные проблемы обеспечения санитарного благополучия населения Омск, 2003. -Т.1 - С. 260-264.

26. Красиков, А.П. Новые механизмы исскуственной регуляции парази-то-хозяинных отношений: автореф. дис. доктора вет. наук. : 16.00.03. / А.П. Красиков; Новосибирск - 1996. - С. 42.

27. Красиков, А.П. Эпизоотология и лабораторная диагностика урогенитального микоплазмоза собак и кошек / А.П. Красиков, Н.Н. Новикова //Проблемы ветеринарного образования в агропромышленном комплексе: сб. науч.тр. ИВМ ОМГАУ.- Омск, 2003. С. 171-173.

28. Куликова, И.Л. Диагностика микоплазма-контаминации в культуре клеток животных // Ветеринария. 1989. - № 8. - С. 35-37.

29. Куликова, И.Л. Иммуноферментный анализ для видовой идентификации микоплазм выделенных из культур клеток / И. Л. Куликова, Т.А. Феоктистова // Иммунитет сельскохозяйственных животных: тр. ВИЭВ М, 1989, Т - 67. - С. 50 - 55.

30. Лабораторная диагностика микоплазмоза и уреаплазмоза у урологических и гинекологических больных / Ю.В. Вульфович и др. / ЖМЭИ. 1995. - №5. - С. 97 - 100.

31. Лыско, С.Б. Схемы профилактики и лечения респираторного и ассоциативного микоплазмоза птиц: автореф. дис.канд. ветеринар, наук: 16.00.03. /С.Б. Лыско; Омск, 2005.-С. 18.

32. Мальцева, Е.С. Клиническое значение микоплазменной инфекции при хроническом пиелонефрите у детей: автореф. дис. . канд. мед. наук: 14. 00. 09/ Е.С. Мальцева; Казань, 1996. - 23 с.

33. Маркина, О.С. Сравнительное изучение геномов микоплазм инфицирующих рогатый скот: автореф. дис. канд. ветеринар, наук. / О.С. Маркина; Казань. - 1995. - С. 8-9.

34. Медицинская микоплазмология / С.В. Прозоровский и др. М: Медицина. - 1995. - С. 287.

35. Микоплазмозы животных / под ред.Я. Р. Коваленко. М. : Колос, 1976.-304 с.

36. Микоплазмозы в патологии животных / Г.Ф. Коромыслов и др.. -М.: Агропромиздат, 1987. 256 с.

37. Микоплазмы и их роль в патологии сельскохозяйственных животных / Я. Р. Коваленко и др. // Труды ВИЭВ. М., 1980. - Т. 51. - С. 24 -29.

38. Миллер, Г.Г. Взаимодействие микоплазм с вирусами человека и животных Ультраструктурный анализ / Г.Г. Миллер, И.В. Раковская, В.Э. Березин // Вестн. АМН СССР. 1991. - №6. - С. 36 - 43.

39. Митрофанов, П.М. Влияние бактерий при микоплазмозе телят / П.М. Митрофанов, К.М. Хакимова, Х.З. Гаффаров //Ветеринария. 1978. -№3 -С.52-55.

40. Митрофанов, П.М. Генитальный микоплазмоз крупного рогатого скота / П.М. Митрофанов. Новосибирск. - 1982. - С.20.

41. Митрофанов, П.М. Иммунопатология при микоплазмозе животных / П.М. Митрофанов, Х.З. Гаффаров, Р.В. Боровик // Ветеринария. -1984.-№5.-С. 35-37.

42. Митрофанов, П.М. Микоплазмоз половых органов у быков / П.М. Митрофанов, И.А. Курбанов // Труды ВИЭВ. М., 1977. - Т. 46. - С. 33-34.

43. Митрофанов, П.М. Патоморфология и патогенез микоплазменных инфекций крупного рогатого скота вызванных М. Bovirhinis и М. Bovigenitalium / П.М. Митрофанов //Научно технический бюллетень -1981.-Вып. ЗЗ.-С. 16-22.

44. Митрофанов, П.М. Патоморфология микоплазмоза половых органов крупного рогатого скота / П.М. Митрофанов, И.А. Курбанов // Труды ВИЭВ.-М., 1972.- Т. 13.-С. 34-36.

45. Наумкина, Е.В. Ureaplasma urealiticum в этиологии урогенитальных микст-инфекций / Е.В. Наумкина, Н.В. Рудаков, Н.В. Темникова // Журнал микробиологии 2006. - №3.-С.93-95.

46. Новикова, Н.Н. Экспресс-методы диагностики ассоциативного уроге-нитального микоплазмоза плотоядных: автореф. дис.канд. вет. наук: 16.00.03./Н.Н. Новикова; Новосибирск, 2002.-С. 18.

47. Ощепков, В.Г. Результаты изучения антигенного родства бруцелл и микоплазм / В.Г. Ощепков, М.Н. Шадрина, Н.Н. Шкиль // Инфекционная патология животных: Сб. науч. тр. Юбилейный выпуск ВНИИБТЖ.- Омск, 2001.-С. 130- 132.

48. Ощепков, В.Г. Этиологическая структура и пути распространения микоплазмозов у телят на территории Сибири / В.Г. Ощепков, М.Н. Шадрина, Н.Н. Шкиль // Инфекционная патология животных: сб. науч. тр.: Юбилейный вып. ВНИИБТЖ. Омск, 2001. - С. 292 - 293.

49. Патогенность полевых штамммов М. Bovigenitalium для генитального тракта быков производителей / З.П. Наумец и др. // Труды ВИЭВ. -М., 1977.-Т. 46.-С. 35-37.

50. Паутов, Ю.М. Активность антигенов разных видов микоплазм в РА и РДСК / Ю.М. Паутов //Ветеринария. 1988. - №1. - С.35 - 37.

51. Персистенция микоплазм в инфицированном организме: наблюдения, причины и механизмы, диагностика / С.В. Прозоровский и др. // ЖМЭИ. 1997. - №4. - С. 47 - 51.

52. Петросова, В.Н. Серологическая характеристика некоторых видов микоплазм по данным реакции агглютинации, связывания комплемента и ингибиции роста / В.Н. Петросова, И.В. Раковская, Г.Я.Каган //ЖМЭИ.- 1969.-.№10. С. 11.

53. Плотко, Е.Э. Роль хламидийной и микоплазменной инфекции в генезе послеродового эндометрита, оптимизация его диагностики и терапии / Е.Э. Плотко: автореф. дис. . канд. мед. наук: 14. 00. 01. / Урал. Гос. мед. акад. Омск, 1996. - 22 с.

54. Притулин, П.И. Роль микоплазм в патологии свиней / П.И. Притулин, В.П. Бердник // Бюллетень ВИЭВ. 1972. - №13. - С.37.

55. Поликарпов, В.П. Выделение микоплазм от ягнят больных пневмониями / В.П. Поликарпов, И.А. Нестеров // Бюллетень ВИЭВ. -М.,1972.-Вып. 13.-С. 61.

56. Поликарпов, В.П. Морфологическое строение микоплазм, выделенных из паринхиматозных органов больных пневмонией ягнят / В.П. Поликарпов, A.M. Никитенко // Труды ВИЭВ. Т. 46. - М., 1977. - С. 50-52.

57. Пустовар, А.Я. Микст-инфекции, обусловленные микоплазмами и другими бактериальными агентами / А.Я. Пустовар // VI съезд пара-зитоценологов Украины. Харьков, 1995. - С. 113-114.

58. Пустовар, А.Я. Особенности микоплазма-инфекции при энзоотической пневмонии свиней / А.Я. Пустовар, // Труды ВИЭВ. М., 1977. -Т. -46. - С. 65-69.

59. Рудаков, Н.В. Актуальные аспекты лабораторной диагностики мелких домашних животных / Н.В. Рудаков, Н.Н. Николаева, А.П. Красиков // сб. науч.тр. ИВМ ОМГАУ.- Омск, 2000. С. 132-134.

60. Румпель, Е. Г. Сравнение различных ПЦР тестов для выявления Chlamydia trachomatis, Ureaplasma urealyticum и Mycoplasma hominis у женщин с нарушением репродуктивной функции /Е. Г. Румпель, В.А. Шаманин // ЖМЭИ. - 2000. - №6. - С. 80 - 83.

61. Серебряков, А.С. Изучение некоторых вопросов эпизоотологии респираторного микоплазмоза птиц / А.С. Серебряков, B.C. Оскол-ков//Сб. трудов ВИВЭ. М: Колос, 1966. - Т.32. - С.9-23.

62. Сравнительная оценка методов диагностики микоплазменных инфекций урогенитального тракта / Д.Н. Балабанов и др. // Журнал Микробиологии 2006. - №4 - С.82-85.

63. Сунцова, О.А. Усовершенствование лабораторной диагностики ассоциативного респираторного микоплазмоза птиц: автореф. дис.канд. ветеринар, наук: 16.00.03. / О.А. Сунцова; Омск, 2004. С. 18.

64. Тимаков, В.Д. L- формы бактерий семейства Micoplasmatoceae в патологии / В.Д. Тимаков, Г.Я. Каган. М: Медицина, 1973. - С. 278.

65. Урогенитальный ассоциативный микоплазмоз плотоядных: эпизоото-логические и диагностические аспекты / А.П. Красиков и др. // Ветеринарная патология №1 (12) 2005. - С. 68-69.

66. Федорова, З.П. Серологический анализ микоплазм, выделенных от птиц, в РСК и РА / З.П. Федорова, О.В.Виноходов, И.А. Собчак // Бюллетень ВИЭВ.- М, 1972.-Вып.13.-С. 83-85.

67. Фукс, П.П. К вопросу о лабораторной диагностике микоплазмоза / П.П. Фукс, Н.В. Калашник, Г.Б. Герус // Информационный бюллетень ИЭКВМ Харьков, 1995. - С. 253 - 255.

68. Хламидии и микоплазмы у детей с заболеваниями мочевыводящих путей / З.Х. Ахмедшин и др. //Актуальные проблемы детской и под-растковой гинекологии и эндокринологии: Материалы 2-ой Респ. науч. практ. конф., 4 дек. 1996 г. - Уфа. - С. 85 - 88.

69. Чернова, О.А. Биохимические аспекты патогенеза при персистенции микоплазм у человека / О.А. Чернова: автореф. дис. . д-ра биол. наук: 03. 00. 04. / О.А. Чернова; Рос. АН Ин -т биохимии им. А. Н. Баха.-М, 1997.-51 с.

70. Чернов, В.М. Микоплазменные инфекции как возможный фактор генетических изменений в клетках высших эукариот / В.М. Чернов, О.А. Чернова // Цитология. 1996. - №2. - С. 107 - 114.

71. Шаповалова, Г.П. Реакция агглютинации для прижизненной диагностики микоплазма-милиагридис инфекции индеек/ Г.П. Шаповалова

72. Тезисы докладов к Всесоюз. науч.-произв. конф. "Комплексная система ветеринарных мероприятий в птицеводстве резерв повышения эффективности производства ". - М., 1989. - С.24 - 26.

73. Шегидевич, Э. А. О методах выделения и культивирования микоплазм / Э.А. Шегидевич, И.А. Яблоньская, М.А. Сидоров // Бюллетень ВИЭВ. 1972. - Вып. 13. - С. 64 -68.

74. Шкиль, Н. Н. Эпизоотологические и иммунологические аспекты микоплазмоза телят во взаимосвязи с бруцеллезом и другими инфекциями: автореф. дис. . канд. ветеринар, наук: 16. 00. 03 / Н. Н. Шкиль. Новосибирск, 2000. - 23 с.

75. Abele-Horn, М. Polymerase chain reaction versus culture for detection of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis in the urogenital tract of adults and the respiratory tract of newborns / M. Abele-Horn, C. Wolff,

77. Albertsen, B.E. Pleuropneumonia-like organisms in the sement of dan-ishartificial insemination bulls / B.E. Albertsen // Nord. Vet. Med. 1955. -7-P.169.

78. Association of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum with some indicators of nonspecific vaginitis / L. Cedillo-Ramirez et al. // Rev. Latinoam. Microbiol. 2000. - V. 42, Jan-Mar. - S. 1 - 6.

79. Baier, R.J. Failure of erythromycin to elimimate airway colonization with ureaplasma urealiticum in very low birth weight infants. / R.J. Baier, J. Loggins, Т.Е. Kruger // BMC Pediatr. 2003. - Sep.4 - P.3-10.

80. Barber, T.L. Primari isolation of mycoplasma organisms (PPLO) from mammalian sources / T.L. Barber, J. Fabricant // J. Bact. 1962. - V. 83. -№ 6. - S. 1268.

81. Bashiruddin, J.B. Evaluation of PCR systems for the identification and differentiation of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis: a collaborative trial / J.B. Bashiruddin, J. Frey, M.N. Konigsson // Vet. J. -2005.-169(2) -P.268-343.

82. Bihari, A. Screening of sexually transmitted diseases (Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum and Chlamydia trachomatis) in young women / A. Bihari // Orv Hetil. 1997. - V. 138, Mar. - S. 799803.

83. Blom, E. Mycoplasmosis infections of the genital organs of Bulls / E. Blom, H. Ern // Acta Vet. Scand. 1967. -8 - P. 186.

84. Blom, E. Mycoplasmas in semen of Danish breeding buuls / E. Blom, H. Ern // Proc. II, Nordic Vet. Cong. 1970.- P.254.

85. Cai, H.Y. Development of real-time PCR for detection of Mycoplasma bovis in bovine milk and lung samples./ H.Y. Cai, P. Bell-Rogers, L. Parker, //J. Vet. Diagn. Invest. 2006. - 17(6) - P.537-582.

86. Chanock, R. Growth on artificial medium of an agent asociated with atypical pneumonia and its identification as a PPLO/ R. Chanock, L. Hay-flick, M. Barile // Proc. Nat. Acad. Sci 1962. - V. 48 - № 1. - S. 41.

87. Comparison of PCR for sputum samples obtained by induced cough and serological tests for diagnosis of Mycoplasma pneumonia infection/ T. Yamasaki et al. // Clin Vaccina Immunol. 2006. -V. 13(6), Jan. - P. 708-718.

88. Detection of Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Ureaplasma urealyticum, and Mycoplasma genitalium in First-void Urine Specimens by Multiplex Polymerase Chain Reaction / J.B. Mahony et al.///Mol. Diagn. 1997. -V. 2, Sep - S. 161-168.

89. Edward, D. An investigatio of the biological properties of organisms of the pleuropneumonia group, with suggestions regarding the identification of streins/ D. Edward // J. Gen. Microbiol. 1950. -№ 4. - P. 311.

90. Edward, D. An investigation of pleuropneumonia-like organism isolated from the bovine genital tract / D. Edward // J. Gen. Microbiol. -1950.-№4.-P. 4.

91. Edward, D. The isoletion of organisms the pleuropneumonia group of dogs/ D. Edward, W. Fitzgerald // J. Gen. Microbiol. 1951. - № 5. - P. 566-569.

92. Edward, D. The pleuropneumonia group of organism: a reiew together with some new observations / D. Edward // J. Gen. Microbiol. 1954. - № 10.-P. 27.

93. Epitope mapping of the variable repetitive region with the MB antigen of Ureaplasma urealyticum / X. Zheng et al/. // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1996. - V. 3, Nov. - S. 774 - 778.

94. Erytromycin for the prevention of chronic lung disease in intubated preterm infants at risk for, or colonized or infected with ureaplasma urealiticum. / C.G. Mabanta et al. // Cochrane Database Systs Rev. -2003.(4):CD0033744

95. Freundt, E.A. The taxonomy of Mycoplasmatales recent progress and current problems / E.A. Freundt // Mycoplasmatales. Paradubice. 1973. -S. 9

96. Garsia, M. Evaluation and comparison of various PCR metods for detection of Mycoplasma gallisepticum infection in chickens./ M. Garsia, N. Ikuta, S. Levisohn // Avian Dis. 2005. - 49(1) - P. 125-157.

97. Gil-Juarez, C. Detection of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urea-lyticum in women sexually active or not / C. Gil-Juarez, B.A. Calderon, J. Montero, A. Yanez // Rev. Latinoam. Microbiol. 1996. - V. 38, Apr-Jun. -S.81 -88.

98. Hoare, M. Surveyof the incidence of Mycoplasma infection in the Oviducts of Dairy Cows / M. Hoare, D. Haig // Vet. Rec. 1969. -V. 85(13) -P.351.

99. In vitro amplification of the 16S rRNA genes from Mycoplasma bovirhinis, Mycoplasma alkalescens and Mycoplasma bovigenitalium by PCR / H. Kobayashi et al. // J. Vet. Med. Sci. 1998. -V. 60, Dec. -S. 1299- 1303.

100. Jasper, D. Mycoplasma: Their role in bovine desease / D. Jasper // J. Am. Vet. Med. Ass. 1967. - V. 12 - P.650.

101. Jurstrang, M. Detection of Mycoplasma genitalium in urogenital speciments by real-time PCR and by conventional PCR assay / M. Jurstrang, J.S. Jasen, H. Fredlung, L. Falk, P. Moiling // J. Med. Microbiol. -2005.-V. 54(1)-P. 23-32.

102. Kehoe, I. Bovine Mycoplasma mastitis / I.Kehoe, N.L. Norcross// Ann. N.Y. Acad. Sci. 1967. - V.143 (1). - P. 337.

103. Klieneberger-Nobel, E. Pleuropneumonia-like organisms in genital infections/ E. Klieneberger-Nobel // Brit. Med. J. 1959. - № 1. - S. 19.

104. Leach, R.N. Comparative studies of Mycoplasma of bovine origin / R.N. Leach // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1967. - V. 143(1). - P. 305.

105. Leberman, P. Suseceptibiliti of pleurapnevmonia-like organisms to the in vitro action of antibiotics: terramycin and neomycin and sodium penicillin / P. Leberman, P. Smith, H. Morton // J. Urol. 1952. - V. 68. -P.399.

106. Leberman, P. Symboiotic growth of pleuropneumonia-like organisms with bacterial colonies/ P. Leberman, P. Smith, H. Morton // Proc. Soc. Exp. Biol. 1949. - V. 72. - S. 328.

107. Leberman, P. The suseceptibiliti of pleurapnevmonia-like organisms to the in vitro action of antibiotics: auretromycin, chloramphenicol, dihy-drostreptomycin and sodium penicillin / P. Leberman, P. Smith, H. Morton // J. Urol. 1950. - V. 64. - P. 167.

108. Lemcke, R. Media for the Mycoplasmatoceae / R. Lemcke // Lab. Pract. 1965. -V. 14. -№ 6. - S. 712.

109. Ley, D.N. Mycoplasma gallisepticum / D.N. Ley, H. W. Yoder // Diseases of poultry. USA/ - 2003. - P.227-243.

110. Naessens, A. Development of a monoclonal antibody to a Ureaplasma urealyticum serotype 9 antigen / A. Naessens, X. Cheng , S. Lauwers // J. Clin. Microbiol.- 1998.-V. 36, Apr. S. 1125- 1127.

111. Newnham, A. An in vitro coparison of some antibacterial, antifungal and antiprotozoal agents in various strains of Mycoplasma (PPLO). / A. Newnham, H.Chu // J. Hyg. Camp. 1965. - V. 63. - P.l - 3.

112. Ogasava, K.K. Efficacy of azitromycin in reducing lower genital Ureaplasma urealiticum colonization in women at risks for preterm delivery. /

113. K.K. Ogasava, Т.М. Goodwin // J. Matern Fetal Med. 1999. - V.8(l). -P.12-18.

114. Olson, N. Characteristics of PPLO isolated from the genital and respiratory tracts of Cattle / N. Olson // Ann. N.Y. Acard. Sci. 1960. - V.79. -P.677.

115. Page, L.A. Isolationof a nw serotype of Mycoplasma of bovine Placenta / L.A. Page // J. Am. Vet. Med. 1972. - V.8. - P.919.

116. Ramires, A.S. Development and evevaluation of diagnostic PCR for Mycoplasma sinovia using primers located in the intergenic spacer region the 23S RNA gene / A.S. Ramires, C.J. Naylor, P.P. Hammond // Vet. Microbiol. 2006. - V.7. -P.12-18.

117. Schaeverbeke, T. Systematic detection of mycoplasmas by culture and polymerase chain reaction (PCR) procedures in 209 synovial fluid samples / T. Schaeverbeke, H. Renaudin // Br. J. Rheumatol. 1997. -V. 36, Mar. - S. 310-314.

118. Schoetensack, H. M. Pure cultivation of the filtrabl virus isolated from canin distemper/ H. M. Schoetensack // Kitasato Arch. Exp. Med. 1934. -№ 11. - S. 277.

119. Speck, J. PPLO from the genital system of Cattle / J. Speck // Tierheilk -1962.-V.14.-P.244.

120. Taylor-Robinson, D. Те isolation and comparative biological and physical characteristics of T-mycoplamas of cattle / D. Taylor-Robinson, M. Willams, D. Haig Leach // J/ Gen. Microbiol. 1968. - V.54. - P. 33

121. Tang, F. F. Further investigations on the causal agent of bovine pleu-ropneumania/ F.F. Tang, H. Wei, J. Edgar // J. Path. Bact. 1936. - V. 42.-S.45.

122. Turner, A. W. Growth-inhibition tests with Micoplasma micoides as a basis for chemotherapy and selectiva culture media / A.W. Turner // Austr. Vet. J. 1960.-№ 5-S. 221.

123. Vazquez, F. Comparison of 3 culture methods for genital mycoplasmas / F. Vazquez, F. Carreno, A.F. Perez // Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. -1995.-V. 13, Oct.-S. 460-463.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.

Данное инфекционное заболевание относят к наиболее опасным и распространенным на территории РФ. Чаще всего диагностируют микоплазмоз КРС и свиней, однако также патология может поражать птиц. Особенность заболевания в том, что его возбудителями являются микроорганизмы, у которых отсутствует стенка клетки. Из-за этой особенности микоплазмоз плохо лечится традиционными антибиотиками предыдущих поколений, а потому требует применения новейших эффективных препаратов. Отсутствие своевременного ветеринарного вмешательства чревато развитием множества осложнений, приводящих хозяйства к крупным экономическим убыткам. Летальность может составлять 10-15% от общего числа больных особей.

Причины микоплазмоза животных

В природе существует более 10 видов микоплазм – микроорганизмов, схожих с бактериями, однако отличающихся по структуре.

К основным причинам, вызывающим заболевание, относят:

  • нарушение гигиены в месте содержания животных;
  • сырость, повышенная влажность воздуха в помещениях;
  • снижение иммунитета отдельных особей из-за плохого микроклимата, питания;
  • покупка в стадо зараженной особи со скрытыми клиническими проявлениями болезни (инкубационный период микроорганизмов достигает 27 дней).

Заражение происходит аэрогенным путем – при дыхании. Особенно чувствительны молодые особи. Чаще всего болеют поросята в возрасте от 3 до 10 недель. Микоплазмоз телят обычно развивается в 15-60-дневном возрасте.

Симптомы микоплазмоза

Среди общих проявлений патологии выделяют:

  • воспаление, болезненность коленных и запястных суставов с образованием свищей;
  • хромота;
  • покраснение глаз;
  • апатия, отсутствие аппетита;
  • повышение температуры тела до 40,1-40,5°С;
  • чихание, слизистые выделения из носа;
  • кашель, затрудненное дыхание (чаще у поросят).

У взрослых коров болезнь поражает вымя, поэтому молоко приобретает желтый цвет, его консистенция становится неоднородной, а объем удоев падает.

Заражение приводит к многочисленным осложнениям:

  • у коров – маститам, эндометритам, вульвовагинитам, преждевременному прерыванию беременности, рождению слаборазвитого потомства;
  • у телят – артритам, пневмониям, менингитам, ринитам, конъюктивитам;
  • у быков – эпидидимитам, орхитам;
  • у свиней – воспалению легких, респираторным заболеваниям.

При отсутствии лечения у коров может развиться бесплодие. Поросята с респираторными осложнениями могут погибнуть от удушия.

Диагностика

Диагноз ставят на основе внешнего осмотра, клинических проявлений и лабораторных исследований тканей, выделений, абортированных или мертворожденных плодов. В лаборатории для обнаружения возбудителя используют метод ПЦР.

Лечение микоплазмоза

Единственным эффективным методом лечения является применение антибиотиков. При микоплазмозе используют препараты последнего поколения, так как к традиционным антибиотикам у микроорганизмов, вызывающих микоплазмоз, вырабатывается резистентность.

Компания NITA-FARM предлагает использовать при микоплазмозе препарат – антибиотик последнего поколения фторхинолонов.

  • В основе – левофлоксацин, вещество, относящееся к фторхинолонам ІІІ поколения.
  • Лечение широкого спектра инфекций, имеющих резистентность к антибиотикам предыдущего поколения.
  • Биодоступность препарата составляет 99%.
  • Уже через 2 часа после применения он достигает максимальной эффективности, хорошо проникая в ткани.
  • 100% результативность в течение 24-48 часов.
  • Одинаково эффективен при лечении микоплазмоза свиней и КРС.
  • Достаточно одной ежедневной инъекции в течение 3-5-дневного курса.
  • В течение 2 суток полностью выводится из организма, в основном, с мочой.
  • Уже через 48 часов после применения препарата молоко можно использовать в пищевых целях.

Эффективность подтверждена клиническими исследованиями и соответствующими документами. Заказать Лексофлон можно непосредственно в компании NITA-FARM.

Профилактика

Ветеринарам и работникам хозяйств следует соблюдать следующие рекомендации:

  • поддерживать чистоту в местах содержания животных;
  • выпаивать телят молоком, проверенным на отсутствие микоплазм;
  • особое внимание уделять случаям мастита, ринита и проверять животное на наличие инфекции;
  • заботиться о полноценном рационе для повышения иммунитета;
  • избегать стрессовых факторов в виде повышения влажности, перепадов температуры.

Микоплазмоз - одно из наиболее распространённых заболеваний крупного рогатого скота, которое в большинстве случаев приводит к смерти животного. Существует эффективная схема борьбы с этим недугом, но успех лечения полностью зависит от диагностики заболевания на ранних стадиях. Об особенностях этого недуга и его лечения поговорим в статье сегодня.

Микоплазмоз - инфекционная болезнь крупного рогатого скота, вызванная одноклеточной бактерией микоплазмы. Несвоевременное лечение может принести существенный экономический ущерб - от микоплазмоза погибает до 15 % стада. Важно! Мастит, эндометрит, вульвовагинит, сальпингит, аборт, бесплодие и рождение недоношенных и слаборазвитых телят могут быть первыми признаками начинающегося микоплазмоза.

Источники и пути заражения

Микоплазмы распространяются воздушно-капельным путём. Главный источник заражения - больное животное, приобретённое в хозяйство. Часто переносчиками заболевания становятся мелкие грызуны и насекомые.

Существует ряд факторов, которые способствуют развитию этого заболевания:

  • повышенная влажность в телятнике;
  • скудный рацион;
  • слабый иммунитет поголовья;
  • несоблюдение гигиенических норм при уходе за животными.

Симптомы и течение болезни

Микоплазмоз имеет следующие симптомы:

  • у коровы повышается температура тела и держится постоянно на уровне +40–41 °С;
  • из носа начинает обильно течь слизь, животное часто чихает;
  • затрудняется дыхание, у коровы появляется кашель;
  • глаза животного краснеют;
  • особь становится апатичной и отказывается от еды;
  • существенно падают удои, молоко приобретает жёлтый цвет и меняет консистенцию;
  • животные начинают хромать из-за воспалительных процессов в суставах и запястьях и образования там свищей.

Диагностика

Для постановки диагноза животных осматривают, изучают клинические проявления заболевания. Важно! Особенно уязвимы к заболеванию молодые особи в возрасте от 15 до 60 дней Выделения и поражённые участки тканей исследуют в лабораторных условиях. Микоплазмоз выявляют на основании данных, полученных методом полимерной цепной реакции (ПЦР).

Как лечить

Комплексная терапия по борьбе с микоплазмозом включает в себя:

  • антибиотики;
  • иммуностимуляторы;
  • отхаркивающие препараты;
  • витамины.

К инфекционным болезням КРС также относят хламидиоз, нодулярный дерматит, бруцеллез, бородавки на вымени, ЭМКАР, блютанг, лептоспироз, злокачественную катаральную горячку, анаплазмоз, парагрипп-3 и актиномикоз.

Антибиотики применяют как внутримышечно, так и перорально или в форме аэрозолей. Последние эффективны при массовом заражении крупного рогатого скота.

В борьбе с микоплазмозом используют следующие препараты:

  • «Тетрациклин»;
  • «Левомицетин»;
  • «Тетравет»;
  • «Энрофлон»;
  • «Биомутин»;
  • «Дибиомицин».

Чтобы стимулировать отхождение мокроты, в схему лечения обязательно должны быть включены отхаркивающие препараты и муколитики. Повысить иммунитет животного можно с помощью витаминов группы В, глобулинов и растительных иммуностимуляторов, например, элеутерококка. Знаете ли вы? Вред от навоза и кишечных газов коров во много раз превышает ущерб, который наносят экологии автомобили.

Профилактика и вакцина против микоплазмоза

Профилактические меры по борьбе с заболеванием состоят из следующих мероприятий:

  • чёткий контроль над животными, которые ввозятся для формирования стада;
  • отказ от сотрудничества с неблагополучными по микоплазмозу хозяйствами;
  • содержание принятых на ферму коров на карантине не менее одного месяца. На протяжении этого времени необходимо обследовать животных, особое внимание уделяя органам дыхания;
  • коровник должен подвергаться регулярной дератизации и обработке от насекомых;
  • при обнаружении случая заражения больное животное должно быть изолировано, а все особи, которые с ним контактировали, - обработаны антибактериальными средствами;
  • при выявлении микоплазмоза коровник, инвентарь, поилки и кормушки дезинфицируют;
  • создание оптимальных условий для содержания КРС.

Вакцинация сугубо от микоплазмоза в большинстве случаев не приводит к желаемому результату. По поводу комплексной вакцины, которая эффективна в борьбе с микоплазмой, лучше проконсультироваться с ветеринаром. Знаете ли вы? Быки не различают цветов. Во время корриды быка злит не красный цвет, а резкие движения тореадора. Микоплазмоз - опасное заболевание, поэтому важно постоянно контролировать состояние стада и при первых подозрениях на его наличие обращаться в ветеринарную службу. Своевременная диагностика и правильное лечение помогут сохранить здоровье поголовья. А содержание и уход за коровами, организованные согласно всем правилам и требованиям, станут лучшими профилактическими мерами.

19.09.2017

Микоплазмоз животных – одно из наиболее распространенных в РФ тяжелых и массовых заболеваний, имеющих инфекционный характер. Возбудитель – одноклеточные бактерии микоплазмы. Страдают от данной патологии КРС, свиньи. Традиционные антибиотики плохо справляются с микоплазмозом, так как клетки микоплазм не имеют стенок. Для лечения необходимы современные ветеринарные препараты, которые на практике доказали свою эффективность в борьбе с этим заболеванием. Использование неэффективных средств или несвоевременное вмешательство ветеринара может привести к серьезным финансовым потерям хозяйства. В запущенных случаях 10-15% поголовья погибает.

Почему возникает микоплазмоз

Микоплазмы относят к бактериям, однако эти микроорганизмы имеют отличную от них структуру без клеточной стенки. Известно более 10 их видов. В организм они проникают при дыхании. Среди наиболее частых причин заболевания:
сниженный иммунитет животных;
плохое питание;
высокая влажность в местах содержания;
неудовлетворительные гигиенические условия;
приобретение в хозяйство зараженного животного, не прошедшего карантин (микоплазмы созревают в течение 27 дней).
Чаще всего заражаются молодые животные: телята в возрасте 15-60 дней, поросята – 3-10 недель.

Симптомы микоплазмоза

Заболевание проявляет себя следующим образом:
в суставах на коленях, запястьях начинаются воспалительные процессы;
у коров страдает вымя, цвет молока становится желтым, консистенция меняется, удои снижаются;
постепенно в суставах образуются свищи, животные хромают;
глаза краснеют;
особи становятся апатичными, отказываются от пищи;
температура держится на уровне 40,1-40,5°С;
из носа выделяется слизь, животные чихают;
дыхание становится затрудненным, возникает кашель (в основном у поросят).

Первичные признаки микоплазмоза следует отличать от различных осложнений.
Коровы часто страдают маститами, вульвовагинитами, эндометритами. Возможны аборты, нередко рождаются плохо развитые телята, развивается бесплодие.
Телята болеют артритом, ринитом, менингитом, пневмонией, конъюктивитом.
Быки подвержены орхиту, эпидидимиту.
Для свиней характерны респираторные заболевания, воспаление легких. У молодых особей развивается асфиксия с последующим летальным исходом.

Как диагностируют микоплазмоз

Животных осматривают, изучают клинические проявления. Пораженные участки тканей, выделения отправляют на исследования в лабораторию. При рождении мертвого плода его также исследуют в лабораторных условиях. Для выявления микроорганизмов применяют метод ПЦР.

Лечение микоплазмоза

Вылечить данную болезнь можно только с помощью новейших препаратов. При микоплазмозе применяют только те антибиотики, которые не вызывают резистентности микоплазм.
В качестве стопроцентно результативного препарата компания NITA-FARM представляет собственную разработку – биодоступный на 99% антибиотик Лексофлон. В основе лекарства – левофлоксацин, его относят к 3-му поколению фторхинолонов.
На практике препарат показал высокую эффективность при лечении разнообразных бактерий, микроорганизмов, которые обладают резистентностью к обычным антибиотикам. Его применяют для лечения КРС, свиней.
Эффект достигается спустя 2 часа после инъекции (одна в сутки). Лечение длится 3-5 дней. Явные признаки улучшения наступают в первые сутки, а в течение 48 часов Лексофлон демонстрирует 100% эффективность.
После курса лечения действующее вещество выходит из организма вместе с мочой за 48 часов. Затем коровье молоко применяют в пищевых целях.
Лексофлон успешно прошел научные испытания в ведущих российских лабораториях и институтах, что подтверждено документально. Заказ препарата можно оформить на сайте компании NITA-FARM или у сертифицированных дистрибьюторов.

Профилактические меры

Гигиена в местах содержания должна соответствовать нормам.
Питание поголовья должно быть полноценным.
Телят следует кормить молоком, которое прошло проверку на наличие микоплазм.
В помещении необходимо поддерживать нормальную влажность и температуру.
При обнаружении ринита, мастита у отдельных особей необходимо проверить их на микоплазмоз.

В 1960 г. I. Davidson, P. Stuart впервые сообщили о том, что микоплазмы у крупного рогатого скота могут вызывать маститы. Позднее, описывая клиническое проявление болезни, P. Stuart и др. указывали, что у больных коров доли вымени были твердыми и отечными, надои молока резко снижались. Молоко при отстаивании быстро разделялось на две фракции: жидкую и более плотную, содержащую клеточные элементы. Общее состояние больных коров обычно было удовлетворительным. Заболевание легко передавалось экспериментально здоровым коровам путем введения секрета из вымени больных в канал соска здоровых коров. Из молока больных коров были выделены культуры микоплазм, которыми авторам удалось воспроизвести у коров экспериментальный мастит. В крови экспериментально зараженных животных были обнаружены антитела к выделенным микоплазмам. Позднее эти культуры были идентифицированы как М. bovigenitalium. В последующих исследованиях было установлено, что М. bovigenitalium чаще выделяется при заболеваниях генитального тракта крупного рогатого скота, чем при маститах. В литературе есть несколько сообщений об этиологическом значении микоплазм этого вида при маститах крупного рогатого скота.
В США И. Нale и др. сообщили о выделении микоплазм от дойных коров с тяжело протекающими маститами. Авторам удавалось заражать здоровых коров секретом из вымени больных животных и бульонной культурой выделенных микоплазм. По культуральным и серологическим свойствам выделенные культуры микоплазм отличались от М. bovigenitalium и были условно названы авторами М. agalactiae var. bovis. В последующем для этого вида микоплазм было предложено другое название - М. bovimastitidis. В настоящее время оба эти названия широко используются в литературе. Микоплазмы этого вида были выделены при маститах крупного рогатого скота во многих штатах США, Италии, Израиле, Австралии в ряде других стран.
В Калифорнии (США) D. Jasper и др. наблюдали заболевание коров маститами в четырех стадах с поголовьем 2800 животных. У заболевших животных снижалась лактация или наступала полная агалактия, отечность молочной железы. Обычно поражались все 4 доли вымени. У части животных развивались артриты. Болезнь возникала в период лактации в разные сезоны года. Температура тела повышалась незначительно и только у отдельных животных. Аппетит и общее поведение оставались нормальными. В начале заболевания в молоке появлялись хлопья, а в последующем - примесь гноя.
Молоком от больных животных, а также бульонными культурами М. bovimastitidis, выделенными от них, авторы заражали здоровых коров путем введения материала в соски. Клинические признаки болезни появлялись через 24-48 часов. В течение 3-8 дней заболевание распространялось на все доли вымени. У коров естественно инфицированных стад культуры микоплазм были выделены из вымени, экссудата матки, а также из фекалий. У коровы, которой инокулировали внутривенно культуру микоплазм, повысилась температура, произошел аборт и развился мастит. Микоплазмы были выделены из плода и молока. У отдельных животных заболевание продолжалось в течение всего лактационного периода, и они все это время оставались носителями микоплазм.
Итальянские исследователи A. Rinaldi и др. указывают, что маститы крупного рогатого скота, обусловленные М. agalactiae var. bovis, широко распространены в Италии. Заболевание нередко сопровождается артритами. Микоплазмы чаще выделяли от коров, доение которых проводят машинами. По мнению этих авторов, микоплазмы сохраняются в навозе 37-236 дней, в соломе, тряпках и губках, используемых при доении, - 15-20, на дереве и нержавеющей стали - 1-2 и в питьевой воде - 23 дня. В неблагополучных по Маститу фермах микоплазмы этого вида нередко выделяются из легких, перибронхиальных и медиастинальных лимфатических узлов телят с макроскопическими и микроскопическими изменениями, связанными с интерстициальной пневмонией. По мнению авторов, такие животные могут служить источником заражения коров.
Обобщая данные относительно этиологического значения М. agalactiae var. bovis при маститах крупного рогатого скота, Е. Karbe и др., A. Mosher и др. указывают, что маститы, вызываемые этим видом микоплазм, характеризуются эозинофильной реакцией и отличаются клинически и гистологически от маститов, вызываемых М. bovigenitalium. Они отмечают, что аллергическая реакция имеет ведущее значение в патогенезе этого заболевания. По мнению A. Mosher, патогенное действие М. bovimastitidis связано с формалинрезистентным токсином этого вида микоплазм.
В США при мастите коров P. Langer, L. Carmichael выделили М. bovirhinis. Авторам удалось этим видом микоплазм воспроизвести мастит у коров. В литературе имеются сообщения о выделении при маститах коров М. arginini, М. alcalescens и A. laidlawii. Следует, однако, отметить, что этиологическое значение этих микроорганизмов окончательно не выяснено. Изучая патогенность T-микоплазм, выделенных от крупного рогатого скота, R. Gourlay и др. экспериментально воспроизвели мастит у коров путем инокуляции культур этих микроорганизмов в вымя через сосковый канал. Необходимо, отметить, что в литературе нет данных о естественных случаях маститов, вызываемых этим микроорганизмом.
Н. Hauke и др. исследовали пробы молока от 1734 коров с клинически здоровым выменем, и ими было выделено 10 штаммов микоплазм. В 197 измененных пробах молока и секрете больных маститом коров авторы не обнаружили микоплазм. Они полагают, что обнаруженные ими микоплазмы, очевидно, попали в молоко здоровых коров из внешней среды. По мнению R. Gourlay и многих других исследователей, молочная железа коров является восприимчивой к заражению микоплазмами и не исключена возможность, что любая потенциально патогенная микоплазма, введенная в железу, вызывает мастит.
Эпизоотология микоплазмозного мастита еще полностью не раскрыта. Маститы у коров, вызываемые микоплазмами, трудно поддаются лечению. У некоторых животных болезнь продолжается от одного года и более, и систематически микоплазмы обнаруживают в молоке, суставах, крови, внутренних органах и даже у абортированных плодов. Для лечения микоплазмозных маститов используют спиромицин, окситетрациклин, неомицин. Больных маститами коров из стада необходимо удалять и закреплять за отдельным обслуживающим персоналом. В общее стадо животных допускают только после полного выздоровления.
Случайные статьи

Вверх