Це інфекція! Єрмакові твердо дотримуються своєї версії: нещастя з Олиною дитиною - результат внутрішньоутробної інфекції. Додають список Олиних хвороб - мабуть, з медичної карти, де фігурують хламідіоз, мікоплазмоз і нелікована безплідність протягом 9 років

Серед ускладнень у хірургії найчастіше зустрічаються інфекційні.Вони можуть призвести до смерті, незважаючи на блискуче виконану операцію. Попередження таких ускладнень – головний принцип хірургії, в основі якого лежать асептика та антисептика.

Асептика комплекс заходів, спрямованих на запобігання потраплянню збудників інфекції в рану чи організм людини.

Антисептика - комплекс заходів, спрямованих на боротьбу з інфекцією в організмі людини, запобігання або ліквідацію інфекційного запального процесу.

Обидва методи є єдиним цілим у профілактиці хірургічної інфекції. Розглядати їх слід з погляду взаємовідносини джерела інфекції, шляхів її передачі та сприйнятливості організму.

Будь-яка наука проходить певні етапи розвитку. У хірургії корінний переворот настав із впровадженням антисептики та асептики, які визначили межу між доантисептичним та антисептичним періодами. І це не випадково, оскільки летальність у доантисептичний період навіть після невеликих розрізів чи проколів сягала понад 80%. У XIX столітті навіть у такого хірурга, як Більрот, летальність після мастектомії та струмектомії становила 50%. Хворі помирали від нагноєнь ран, бешихи, гангрени, сепсису. Пріоритет у розробці антисептичного методу належить англійському хірургу Джозефу Лістер (1829-1912). Його роботи зробили переворот у хірургії та започаткували новий етап у її розвитку.

Хірурги XVIII століття ототожнювали гнійні ускладнення ран (флегмону, пику, правець та ін.) з гниттям, обумовленим, на їхню думку, впливом на рану повітря, яке охолоджує та висушує рану. Тому вони рекомендували накладати оклюзійні, повітронепроникні пов'язки, а англійський хірург Бенджамен Белл радив робити перев'язки якнайшвидше, щоб обмежити час впливу повітря (особливо «нечистого») на рану. Його співвітчизник Прайнгль вважав, що для очищення повітря треба краще вентилювати шпитальні приміщення.

Французький хірург Путо (XVIII століття) встановив важливий факт, що мав значення для подальшого формування основних положень контактного інфікування ран: гнійне ранове відокремлюване від одного хворого при попаданні в рану іншого викликає у останнього гнійне запалення. Так, при використанні вже використаного перев'язувального матеріалу або матеріалу, який забруднений руками, «зараженими поганим повітрям хворих», відбувається зараження ран.

Припущення ролі мікробів у розвитку гнійних ускладнень ран висловлювали та інші хірурги. Н.І. Пирогов під час Кримської війни (1853-1856) писав: «...можна сміливо стверджувати, що більшість поранених помирає не стільки від самих ушкоджень, скільки від госпітальної зарази... Від нас недалеко той час, коли ретельне вивчення травматичних і госпітальних міазм дасть хірургам інший напрямок». Н.І. Пирогов вважав, що інфекція («міазми») передається через руки, білизну, матраци, перев'язувальний матеріал, і рекомендував у зв'язку з цим гігієнічні заходи. Він застосовував на лікування ран спирт, йод, нітрат срібла, здатні знищити «міазми».

Пріоритет у системному застосуванні антисептики належить угорському лікареві-акушеру І. Земмельвайсу, який застосував у 1847 р. для знезараження родових шляхів породіль, рук, інструментів та інших предметів, що стикаються з родовими шляхами, розчин хлорного вапна. До цього методу І. Земмельвайс підійшов не випадково: він експериментально довів наявність забрудненого початку у виділеннях з матки жінок, хворих на пологову гарячку (сепсис): кролики, в кров яких вводили виділення, гинули. Виходячи з цього, І. Земмельвайс вважав, що перенесення заразного початку від хворої породіллі до здорової, проникнення його через велику ранову поверхню, якою є матка після пологів, призводять до розвитку сепсису. Застосування запропонованого І. Земмельвайсом методу обробки призвело до зниження летальності у його клініці на третину. Однак метод не набув поширення, оскільки більшість хірургів вважали причиною зараження ран повітряну інфекцію.

Безпосередньою передумовою до розробки Дж. Лістером антисептичного методу в хірургії послужило відкриття в 1863 причини бродіння і гниття Луї Пастером, який встановив, що в їх основі лежать проникнення і життєдіяльність специфічних мікроорганізмів. Л. Пастер розробив і методи запобігання цим процесам. Безсумнівна заслуга Дж. Лістера полягає в тому, що він переніс відкриття Л. Пастера в хірургію, провів паралелі між гниттям і нагноєнням ран, вважаючи причиною нагноєння проникнення ззовні

когось хвороботворних почав. Виходячи з цього, він запропонував закривати рану спеціальною пов'язкою, яка не пропускає повітря, а для попередження гниття в рані використовувати фенол. Вибір фенолу був випадковим - вона є складовою дьогтю, а дьогтем тоді заливали помийні ями попередження гниття у яких. За кілька років до цього Лемер встановив дезінфікуючу дію фенолу. Використовуючи фенол для лікування відкритих переломів, Дж. Лістер отримав чудовий результат. Після дворічних досліджень він створив систему профілактики гнійних ускладнень ран і в 1867 опублікував працю під назвою «Про новий спосіб лікування переломів і гнійників з зауваженнями про причини нагноєння». Суть профілактики полягала у боротьбі з повітряною та контактною інфекцією та зводилася до знищення бактерій за допомогою фенолу у повітрі, на руках, інструментах та інших предметах, що стикаються з раною. Ефективність системи профілактики інфекційних ускладнень за допомогою методу Лістера переконливо підтверджувалася зниженням у кілька разів частот смертельних наслідків від гнійних ускладнень.

І незважаючи на те, що і раніше висловлювалися припущення про роль якихось зовнішніх факторів у розвитку септичних ускладнень та пропонувалися ті чи інші засоби для попередження ускладнень, заслуга Дж. Лістера в тому, що він створив систему профілактики – антисептичний метод. Основними компонентами цієї системи були багатошарова листерівська пов'язка, обробка рук, інструментів, стерилізація повітря в операційній. Пов'язка складалася з наступних шарів: до рани прилягала пов'язка з шовку, просоченого 5% розчином фенолу, поверх неї накладали 8 шарів марлі, просоченої тим же розчином з додаванням каніфолі, покривали прогумованою тканиною або клейонкою і фіксували марлевими бінтом. Руки хірурга, інструменти, перев'язувальний та шовний матеріал мили 2-3% розчином фенолу. Операційне поле обробляли тим самим розчином. В операційній за допомогою пульверизатора розпорошували розчин фенолу до та під час втручання для стерилізації повітря.

Застосування методу Лістера призвело до зниження частоти гнійних ускладнень ран, але виявило недоліки. Використання розчинів фенолу, крім позитивного, мало негативну дію, викликаючи загальну інтоксикацію хворих, опік тканин в ділянці рани, ураження нирок, захворювання хірургів (дерматит, опіки, екзему рук). Робилися спроби замінити фенол іншими речовинами: розчином ртуті дихлориду (сулеми), борної або саліцилової кислоти, перманганату калію та ін. Однак чим сильніше виявлялося антимік

робное дію використовуваних засобів, тим паче вираженим було їх токсичне впливом геть організм.

В історії антисептики відомі драматичні моменти. Так, висловлену Л. Пастером в 1880 р. думка про те, що всі гнійні запалення мають одного збудника, Е. Бергман поставив під сумнів як недоказову і тому сумнівну. Швейцарський хірург К. Гарре (1857-1928) для доказу правоти Л. Пастера втер собі в шкіру лівого передпліччя мікробну культуру стафілокока з колоній, отриманих при сівбі гною хворого на остеомієліт. На місці інфікування розвинувся великий карбункул, оточений багатьма дрібними фурункулами. При сівбі гною був виділений стафілокок. Лікар видужав. Провівши експеримент на собі, він досвідченим шляхом довів, що стафілококи викликають різні гнійні захворювання: абсцес, фурункул, карбункул, остеомієліт.

Поступово інтерес до методу Лістера та його модифікацій втрачався, і через 25 років на зміну йому прийшов асептичний метод, який полягав у стерилізації всіх предметів, що торкаються рани. Основоположником асептики став німецький хірург Еге. Бергман, працював раніше у Росії. На конгресі хірургів у Берліні у 1890 р. він доповів про новий метод боротьби з рановою інфекцією та продемонстрував успішно прооперованих у асептичних умовах хворих. Головуючий на конгресі Дж. Лістер привітав Е. Бергмана з успіхом, назвавши асептичний метод блискучим завоюванням хірургії.

В основі запропонованого асептичного методу лежить принцип знищення мікробної флори на всіх предметах, що стикаються з раною, впливом високої температури (кип'ятінням, дією гарячої пари та ін.). Починаючи з 1892 р. метод асептики став застосовуватися у багатьох клініках світу. Результати були настільки разючими, що з'явилися заклики повністю відмовитися від антисептичного методу (боротьба з інфекцією в організмі людини) і навіть виключити антисептичні засоби з хірургічної практики. Однак обійтися без них у хірургії виявилося неможливим: обробка рук хірурга та операційного поля, санація гнійних порожнин та багато інших заходів нездійсненні без антибактеріальних препаратів, тим більше що згодом з'явилися нові малотоксичні антисептичні засоби, а методи антисептики поповнилися не лише хімічними, а й фізичними. засобами (лазер, ультразвук та ін.).

Основні вимоги до антисептичних засобів такі: бактерицидна або бактеріостатична дія на мік-

роорганізм; відсутність подразнюючого токсичного впливу на тканини при місцевому застосуванні; збереження властивостей при зіткненні з біологічними рідинами (кров'ю, ексудатом, гноєм) та повітрям (вони не повинні бути леткими); крім того, їхнє виробництво має бути дешевим.

ДЖЕРЕЛА І ШЛЯХИ ПОШИРЕННЯ ІНФЕКЦІЇ В ХІРУРГІЇ

Під джереломінфекції розуміють житла, розвитку, розмноження мікроорганізмів. По відношенню до організму хворого (пораненого) можливі екзогенні (поза організмом) та ендогенні (всередині нього) джерела хірургічної інфекції.

Основні джерела екзогенної інфекції- хворі на гнійно-запальні захворювання, бацилоносії, рідше - тварини (схема 1). Від хворих на гнійно-запальні захворювання мікроорганізми потрапляють у зовнішнє середовище (повітря, навколишні предмети, руки медичного персоналу) з гноєм, слизом, мокротинням та іншими виділеннями. За недотримання певних правил поведінки, режиму роботи, спеціальних методів обробки предметів, інструментів, рук, перев'язувального матеріалу мікроорганізми можуть потрапити в рану і викликати гнійно-запальний процес. Мікроорганізми проникають у рану із зовнішнього середовища різними шляхами: контактним -при дотику з раною інфікованих предметів, інструментів, перев'язувального матеріалу, операційної білизни; повітряним- З навколишнього повітря, в якому мікроорганізми знаходяться; імплантаційним-

Схема 1.Екзогенне інфікування.

інфікування при залишенні в рані на тривалий час або постійно тих чи інших предметів (шовного матеріалу, кісткових фіксаторів та інших імплантатів), інфікованих під час виконання операції або порушення правил стерилізації.

Тварини як джерело хірургічної інфекції відіграють меншу роль. При обробці туш хворих тварин можливе зараження сибіркою. З випорожненнями тварин у довкілля можуть потрапити збудники правця, газової гангрени. На навколишніх предметах, землі ці мікроорганізми тривалий час перебувають у вигляді суперечка. При випадкових травмах вони можуть проникнути в рану із землею, уривками одягу та іншими предметами та спричинити специфічне запалення.

Джерелом ендогенної інфекціїє хронічні запальні процеси в організмі, як поза зоною операції (захворювання шкіри, зубів, мигдаликів та ін.), так і в органах, на яких проводиться втручання (апендицит, холецистит, остеомієліт та ін.), а також мікрофлора порожнини рота, кишечника , дихальних, сечових шляхів та ін. Шляхи інфікування при ендогенній інфекції - контактний, гематогенний, лімфогенний (схема 2)

Контактнеінфікування рани можливе при порушенні техніки операції, коли в рану можуть потрапити ексудат, гній, кишковий вміст або при перенесенні мікрофлори на інструментах, тампонах, рукавичках внаслідок недотримання запобіжних заходів. З осередку

Схема 2.Ендогенне інфікування.

запалення, розташованого поза зоною операції, мікроорганізми можуть бути занесені з лімфою (лімфогеннийшлях інфікування) або зі струмом крові (гематогеннийшлях інфікування).

Методами асептики ведуть боротьбу з екзогенною інфекцією, методами антисептики – з ендогенною інфекцією, у тому числі проникла в організм із зовнішнього середовища, як це буває при випадкових пораненнях. Для успішної профілактики інфекції необхідно, щоб боротьба велася на всіх етапах (джерело інфекції – шляхи інфікування – організм) шляхом комбінації методів асептики та антисептики.

Для попередження інфікування навколишнього середовища за наявності джерела інфекції - хворого з гнійно-запальним захворюванням - необхідні в першу чергу організаційні заходи: лікування таких хворих у спеціальних відділеннях хірургічної інфекції, виконання операцій та перев'язок в окремих операційних та перев'язувальних, наявність спеціального персоналу для лікування хворих та догляду за ними. Таке правило існує і для хірургії в амбулаторних умовах: прийом хворих, лікування, перев'язки та операції виконують у спеціальних кабінетах.

Бацилоносіїв (до них відносять людей практично здорових, але патогенну мікрофлору, що виділяють в навколишнє середовище, найчастіше з носа, глотки) необхідно відсторонити від роботи в хірургічних установах і провести відповідне лікування, повернутися до роботи їм дозволяють лише після бактеріологічного контролю.

АСЕПТИКА

Препарати, що мають антибактеріальну дію на гнійну мікрофлору, ділять на дві групи - хіміотерапевтичні засоби (див. Антисептика)та хімічні засоби для дезінфекції та стерилізації.

Препарати, що застосовуються для дезінфекції та стерилізації, використовують для запобігання потраплянню інфекції в рану, тобто. боротьби з інфекцією шляхах її передачі. Деякі хімічні антибактеріальні засоби можуть застосовуватися як хіміотерапевтичні, так і засоби для дезінфекції та стерилізації (наприклад, хлоргексидин, водню пероксид та ін.).

З хімічних засобів для дезінфекції та стерилізації широко використовують у хірургії препарати йоду: 5% і 10% спиртовий розчин застосовують для змащування шкіри навколо рани, обробки поверхневих ран та саден, операційного поля.

Йод+калію йодидмістить близько 4,5% вільного йоду, перед вживанням його розводять дистильованою водою у співвідношенні 1:4,5. Препарат застосовують для обробки операційного поля.

Повідон-йод -з'єднання йоду з полівінілпіролідоном, що містить 0,1-1% йоду. Використовують для обробки рук операційного поля.

Хлорамін Б (Chloraminum) використовують у вигляді (1-3%) розчину для дезінфекції рук, предметів догляду за хворими, неметалічних інструментів, приміщень.

Надмурашина кислота у комплексі з пероксидом водню (первомур, препарат С-4) призначений для обробки рук перед операцією. Готують спеціальний розчин (див. Підготовка рук до операції.Препарат застосовують також для обробки хірургічних інструментів та гумових рукавичок.

Етанол (Spiritus aethylicus) використовують у вигляді 70% чи 96% розчину для обробки рук, операційного поля, оптичних інструментів, шовного матеріалу.

Формалін (Formalinum) - розчин, що містить 36,5-37,5% формальдегіду. Застосовують як 0,5-5% розчину для дезінфекції рукавичок, інструментів, катетерів, дренажів.

Дегміцид (Degmicidum)містить 30% дегміну (четвертичне амонієве з'єднання). Застосовують 1% розчин (тобто у розведенні 1:30) для обробки операційного поля та рук хірурга.

Бензалконію хлорид у вигляді 1% або 10% розчину застосовують для стерилізації інструментів (у розведенні 1:1000; експозиція - 30 хв), гумових рукавичок, дренажів (у розведенні 1:4000; експозиція - 24 год). З метою попередження корозії інструментів додають карбонат натрію з розрахунку 2 г на 1 л робочого розчину.

Хлоргексидинвипускається у вигляді біглюконату (Chlorhexidini bigluconas).Синонім – гібітан. Випускається у вигляді 20% розчину. Для обробки операційного поля та дезінфекції інструментів розчин розводять 70% розчином етанолу щодо 1:40. Отриманим 0,5% водно-спиртовим розчином обробляють операційне поле 2 рази з інтервалом 2 хв. Інструменти стерилізують шляхом занурення їх у розчин на 2 хв.

Із сучасних засобів для дезінфекції та передстерилізаційної підготовки використовують «Аламінол» (Росія). Чинний початок становлять 5% розчин алкілдиметилбензиламоній хлорид і 8% розчин гліоксалу, а також поверхнево-активна речовина, рН 3,5. Має широку бактерицидну дію по відношенню до неспецифічної гнійної флори, збудників туберкульозу, грибів, вірусів, а також миючими властивостями.

Застосовують для дезінфекції поверхонь у приміщеннях, предметах обстановки, санітарно-технічного обладнання, білизни, хірургічних інструментів, ендоскопів. Концентрація засобу препарату 1-10%, препарат розчиняють у воді.

Застосування - протирання поверхонь або занурення предметів дезінфікуючий розчин. Розчин застосовують багаторазово. Контроль якості передстерилізаційної підготовки проводять з використанням проби на залишкову кров (бензидинової, амідопіринової проби). Час обробки (занурення) виробів із металу, пластмас – 60 хв при концентрації 5%, забрудненої білизни (замочування) – 120 хв при концентрації 5%.

Дезінфекційний засіб «Кемі-сайд» (Росія). Діючі початки 1,1-біфенід - 3-3,5%, 5-хлор-2-гідроксідіфенілметан - 2,6-3,2%. Спектр бактерицидної дії широкий: включає паличку туберкульозу, віруси, гриби. Препарат розводять водою, готують 0,5 %, 1 %, 2 % розчин.

Застосовують для дезінфекції апаратів, приладів, санітарно-технічного обладнання, поверхонь стін, столів, підлоги. Спосіб знезараження - одноабо дворазове протирання.

Дезінфікуючий засіб "Лізафін-спеціаль" (Росія). Початки: алкілдиметилбензиламмоній хлорид, глютаровий альдегід, глікосоль, спирт денатурований.

Антимікробний спектр – бактерії, включаючи паличку туберкульозу, віруси, гриби. Має миючу властивість.

Застосовують у концентраціях 1-5% препарату. Використовують для дезінфекції поверхонь (підлоги, стінок), хірургічних столів, меблів, предметів догляду за хворими. Застосовують для передстерилізаційної обробки предметів зі скла, металу, пластмас – ендоскопів, інструментів. Дезінфекцію проводять шляхом замочування, протирання, занурення. Час обробки інструментів, ендоскопів при використанні 1% розчину – 60 хв, 1,5% – 30 хв, 2% – 15 хв при зануренні в розчин препарату.

Боротьба із мікрофлорою на шляхах повітряного інфікування

Хірургічний стаціонар включає кілька основних функціональних підрозділів: операційний блок, палати хірургічного відділення, перев'язувальні, процедурні та ін.

Успіх профілактики екзогенного інфікування у хірургічних хворих можливий за умови комплексного підходу на всіх етапах

перебування хворого у стаціонарі: приймальне відділення – хірургічне відділення – діагностичні кабінети – перев'язувальна – операційна.

Вся робота хірургічного стаціонаруз профілактики екзогенної інфекції починається з поділу хворих на «чистих» та «гнійних». Хворих з гнійно-запальними хірургічними захворюваннями госпіталізують до гнійних (інфекційних) хірургічних відділень, які повністю ізольовані від чистих відділень. Вони працює свій персонал, є свої перев'язувальні, операційні, процедурні приміщення (для виконання вливань, інфузій, взяття крові для лабораторних досліджень тощо). Це відділення має бути в окремому приміщенні. За наявності лише одного хірургічного відділення у ньому виділяють спеціальні палати для інфікованих хворих, палати розташовуються в одній його частині (відсіку) з окремою перев'язувальною в тому ж відсіку.

У приймальному відділенні, де проводяться первинний огляд та обстеження надійшли, відразу ж поділяють потоки хворих на «чистих» та «гнійних». У приймальному відділенні виконують санітарно-гігієнічну обробку, яка передбачає миття хворих (гігієнічну ванну або душ) та їх перевдягання. За певних умов (педикульоз, короста) проводять спеціальну обробку, а також дезінфекцію та дезінсекцію білизни.

У хірургічному відділенні для підтримки санітарного режиму проводять щоденне вологе прибирання із застосуванням антисептичних засобів та 1 раз на 3 дні - вологе прибирання стін (протирання вологою щіткою, ганчіркою). Вологій обробці піддають меблі відділення. Регулярне провітрювання, використання кондиціонерів дозволяють знизити ступінь бактеріальної обсіменіння приміщень відділення. Важливе значення має санітарний режим для персоналу: душ перед початком роботи, змінний одяг та взуття, носіння ковпаків. Важливий засіб профілактики - обстеження персоналу на бацилоносійство (мазки з носа, глотки) та ізоляція співробітників із застудними та гнійничковими захворюваннями.

Основний шлях інфікування ран в операційній- контактний (близько 90% випадків), лише у 10% випадків інфікування відбувається повітряним шляхом.Кожен член хірургічної бригади, незважаючи на спеціальну підготовку до операції, стерильну операційну білизну, дотримання режиму роботи виділяє в навколишнє повітря до 1500 мікроорганізмів за хвилину. За 1-1,5 год роботи однієї хірургічної бригади бактеріальна забрудненість повітря в операційній збільше-

ється на 100%. Допустима кількість мікроорганізмів в 1 м 3 повітря операційної перед початком роботи не повинна перевищувати 500, під час операції - 1000 за умови відсутності в повітрі патогенних мікроорганізмів. Підтримувати такий рівень вдається за допомогою спеціальних пристроїв системи вентиляції, режиму роботи та збирання операційної, дезінфекції повітря та предметів.

Хірургічний стаціонар включає кілька основних функціональних підрозділів: операційний блок, хірургічні відділення, перев'язувальні, процедурні.

Операційний блок - набір спеціальних приміщень для виконання операцій та проведення заходів, що їх забезпечують. Операційний блок повинен розташовуватися в окремому приміщенні або в крилі будівлі, з'єднаному коридором з хірургічними відділеннями, або на окремому поверсі багатоповерхового хірургічного корпусу. Найчастіше є розділені між собою операційні для виконання втручань у «чистих» і «гнійних» хворих, хоча доцільніше передбачити окремий, ізольований операційний блок при гнійних хірургічних відділеннях.

Операційний блок відокремлений від хірургічних відділень спеціальним тамбуром - найчастіше це частина коридору, в яку виходять приміщення операційного блоку загального режиму. Для забезпечення режиму стерильності в операційному блоці виділяють спеціальні функціональні зони (схема 3).

1. Зона стерильного режимупоєднує операційну, передопераційну та стерилізаційну. У приміщеннях цієї зони роблять такі дії: в операційній - безпосередньо операції; у передопераційній – підготовку рук хірурга до операції; у стерилізаційній – стерилізацію інструментів, які знадобляться у ході операції або використовуються повторно.

2. У зону суворого режимувходять такі приміщення, як санпропускник, що складається з кімнат для роздягання персоналу, душових установок, кабін для одягу стерильного одягу. Ці приміщення розташовуються послідовно, і персонал виходить із кабіни для одягання прямо чи через коридор у передопераційну. До цієї зони входять приміщення для зберігання хірургічних інструментів та апаратів, наркозної апаратури та медикаментів, кабінет переливання крові, приміщення для чергової бригади, старшої операційної сестри, санітарний вузол для персоналу операційного блоку.

3. Зона обмеженого режимуабо технічна зона, що об'єднує виробничі приміщення для забезпечення роботи операційного блоку.

Схема 3.Влаштування операційного блоку.

ка: тут знаходяться апаратура для кондиціонування повітря, вакуумні установки, установки для постачання операційної киснем та наркотичними газами, тут же розташовуються акумуляторна підстанція для аварійного освітлення, фотолабораторія для рентгенівських плівок.

4. У зоні загального режимузнаходяться кабінети завідувача, старшої медичної сестри, приміщення для розбору брудної білизни та ін.

Режим роботи операційного блоку передбачає обмеження його відвідин. У зоні стерильного режиму повинні перебувати лише хірурги та їх асистенти, операційні сестри, анестезіологи та анестезисти, які беруть участь в операції, санітарка для поточного прибирання операційної. У зону стерильного режиму допускаються студенти і лікарі, що стажуються. Працівники операційного блоку носять спеціальний одяг: халати або куртки та штани, що відрізняються за кольором від одягу співробітників інших відділень.

Контроль за режимом стерильності операційного блоку проводять періодично шляхом бактеріологічного дослідження повітря операційної, змивів зі стін, стелі, апаратів та приладів. Матеріали для сівби беруть 1 раз на місяць; щотижня, крім того, вибірково роблять посів із рук працівників блоку для контролю стерильності.

Стерильний режим операційної досягається рахунок попередження занесення сюди з інших приміщень мікроорганізмів та його поширення. Спеціальний пристрій операційного блоку, використання стерильних шлюзів перед входом в операційну, підготовка хворого до операції (миття, зміна білизни, збривання волосся в області операційного поля), підготовка до операції персоналу (обов'язкове перевдягання, використання стерильної білизни, надягання бахіл, шапочок, масок, обробка рук) значно обмежують проникнення мікроорганізмів в операційну.

Мікроорганізми у повітрі, на предметах дуже рідко перебувають у ізольованому вигляді - переважно вони фіксовані на мікроскопічних частинках пилу. Тому ретельне видалення пилу, як і запобігання проникненню його в операційну, зменшують ступінь мікробного забруднення.

В операційній передбачені такі види збирання:попередня, поточна, післяопераційна, заключна та генеральна.

Перед початком операції вологою ганчіркою протирають усі предмети, прилади, підвіконня, видаляють пил, що осів за ніч. (Попереднє прибирання).У ході операції постійно прибирають серветки, що впали на підлогу, кульки, інструменти. (поточне прибирання).У проміжку між операціями, коли хворого вивезено з операційної, прибирають білизна, серветки, інструменти; вологою серветкою, змоченою розчином антисептичних засобів, протирають операційний стіл і накривають його простирадлом; підлогу протирають вологою ганчіркою (післяопераційне прибирання).Після закінчення робочого дня виробляють заключну убор-

ку, яка включає вологе прибирання з протиранням стелі, стін, підвіконь, всіх предметів та апаратури, підлоги з використанням дезінфікуючих розчинів (1-3% розчину пероксиду водню з синтетичним миючим засобом, розчину бензалконію хлориду та ін.) та подальшим включенням бактерицидних ламп.

Наприкінці тижня здійснюютьгенеральне прибиранняопераційної. Починають її з операційної дезінфекції: стеля, стіни, всі предмети, підлогу обприскують дезінфікуючим розчином, а потім видаляють його шляхом протирання. Після цього проводять загальне вологе прибирання та включають бактерицидні ультрафіолетові (УФ) лампи. Генеральне прибирання може бути і позачерговим - при забрудненні операційною гноєм, кишковим вмістом, після операції у хворих з анаеробною інфекцією (газовою гангреною).

Для опромінення повітря та предметів, що знаходяться в операційній, використовують підлогові (пересувні), настінні, стельові бактерицидні УФ-лампи різної потужності (рис. 1). Бактерицидні лампи, забезпечені спеціальними екранами, що захищають від прямої дії УФ-променів, можуть працювати за наявності людей в операційній.

Крім бактерицидних ламп, для знезараження повітря в операційній можуть бути використані аерозолі бактерицидних речовин.

Мал. 1.Бактерицидні ультрафіолетові лампи: а - стельова; б – підлогова (пересувна) типу «Маяк».

Мал. 2.Операційна з ламінарним потоком повітря: 1 – фільтр; 2 – потік повітря; 3 – вентилятор; 4 - передфільтр; 5 - отвір для надходження зовнішнього повітря; 6 - перфорована підлога.

ляються спеціальним апаратом типу «Дезінфаль». Як бактерицидні речовини використовують суміш, що містить 3% розчин пероксиду водню і 0,5% молочної кислоти. Розпилення повинно проводитися напередодні, у крайньому випадку – не менше ніж за 2 години до початку операції.

Попередження забруднення повітря в операційній досягають механічною системою вентиляції, що здійснюється шляхом подачі повітря з вулиці або рахунок його рециркуляції. За допомогою припливної вентиляції повітря нагнітається через фільтри в операційну. Разом з пилом, що осідає на фільтрах, видаляються фіксовані на ній мікроби. Повітря виходить із операційної через природні щілини. Такий напрямок потоку дозволяє уникнути проникнення забрудненого повітря із сусідніх з операційною приміщень, у тому числі з хірургічних відділень. За відсутності централізованої системи очищення повітря від пилу та мікробів можуть бути використані спеціальні пересувні очищувачі повітря (ВОПР-1,5). За 15 хв роботи апарату кількість мікробів в операційній зменшується у 7-10 разів.

Для виконання деяких втручань (таких, як пересадка органів, що вимагає подальшого застосування імунодепресивних засобів, імплантація протезів, операції при великих опіках) використовують операційні з ламінарним потоком стерильного кондиціонованого повітря (рис. 2). Кількість мікроорганіз-

мов у таких операційних у десятки разів нижче, ніж за звичайної системи кондиціювання повітря. Ламінарний потік забезпечує за годину 500-кратний обмін повітря, що нагнітається під тиском 0,2-0,3 атм. через спеціальний фільтр, що являє собою стелю операційної, і виходить через отвори в підлозі. Цим створюється постійний вертикальний потік: в операційну надходить стерильний повітря, а спрямований його потік забирає мікроорганізми, що потрапили в повітря від хворого або осіб, які беруть участь в операції. Ламінарний потік повітря може бути як вертикальним, так і горизонтальним.

У старих операційних можлива установка спеціального боксаізолятора з ламінарним потоком повітря: стіни боксу з пластику або скла не досягають підлоги, і стерильне повітря, що нагнітається через фільтр-стелю, створює вертикальний ламінарний потік, який витісняє наявне в боксі повітря в щілини, що утворилися між його стінками. (Рис. 3).

Мал. 3.Бокс-ізолятор з ламінарним потоком повітря, що встановлюється в операційній.

Боротьба з мікрофлорою на етапах контактного інфікування рани

Для запобігання контактному інфікуванню необхідно, щоб було стерильним все, що стикається з раною.Цього досягають спеціальною обробкою операційної білизни, перев'язувального та шовного матеріалу, рукавичок, інструментів, обробкою рук хірурга та операційного поля. Стерилізація(Sterilis- безплідний) - повне звільнення від мікроорганізмів усіх предметів, розчинів, матеріалів. Дезінфекціяпередбачає знищення патогенної мікробної флори. Стерилізація шовного матеріалу спрямовано профілактику як контактного, і імплантаційного інфікування рани.

Стерилізація інструментів, перев'язувального матеріалу та білизни включає такі основні етапи: I – передстерилізаційна підготовка матеріалу; II - укладання та підготовка до стерилізації; III – стерилізація; IV – зберігання стерильного матеріалу. Усі ці етапи виконують відповідно до галузевого стандарту «Стерилізація та дезінфекція виробів медичного призначення».

Стерилізація інструментів

Етап I – передстерилізаційна підготовка

Мета передстерилізаційної підготовки – ретельне механічне очищення інструментів, шприців, ін'єкційних голок, систем для трансфузії, видалення пірогенних речовин та знищення вірусу гепатиту. Персонал повинен працювати у гумових рукавичках.

Вживані, але неінфіковані інструментиретельно миють проточною водою щітками в окремій раковині протягом 5 хв (інструменти, забруднені кров'ю, миють відразу, не допускаючи висихання крові) і потім на 15-20 хв замочують в одному зі спеціальних миючих розчинів, підігрітому до 50 °С. Шприци обробляють у розібраному вигляді.

Після замочування інструменти миють у тому ж розчині йоржами, щітками (особливо ретельно обробляють замки, зубчики, насічки), потім протягом 5 хв обполіскують теплою водою і протягом 1 хв прополіскують у дистильованій воді. Після цього інструменти та шприци поміщають у сухоповітряний стерилізатор при температурі 85 °С для висушування, після чого вони готові до стерилізації.

Інструменти та шприци, забруднені гноєм або кишковим вмістом, попередньо поміщають в емальовані ємності з 0,1% рас-

твором діоциду на 30 хв. Потім у цьому розчині їх миють йоржами, щітками, обполіскують проточною водою і опускають в один з миючих розчинів, проводячи подальшу обробку за описаною вище методикою.

Інструменти після операції, проведеної у хворого з анаеробною інфекцією, замочують на 1 год у спеціальному розчині, що складається з 6% розчину пероксиду водню і 0,5% розчину миючого засобу, потім миють щіткою в цьому розчині і кип'ятять 90 хв. Лише після цього інструменти готують до стерилізації так само, як і неінфіковані інструменти. Через 1 добу (час для проростання суперечка) їх піддають автоклавування або кип'ятіння (дрібна стерилізація).

Стерилізацію голок проводять вимушено, коли немає можливості застосувати голки разового використання.

Пункційні, ін'єкційні голки після вживання промивають за допомогою шприца теплою водою, а потім 1% розчином гідрокарбонату натрію, канал голки прочищають мандреном, промивають 0,5% розчином аміаку і проточною водою. Після цього голку з вставленим мандреном кип'ятять протягом 30 хв в 2% розчині натрію гідрокарбонату, а через 8-12 год - повторно дистильованої протягом 40 хв і висушують, після чого канал голки просушують шляхом продування діетиловим ефіром або спиртом за допомогою шприца чи гумової груші. Голки, забруднені гноєм, тягне миють, просвіт промивають проточною водою; потім поміщають на 1 год дезинфікуючий розчин, додатково промиваючи канал за допомогою шприца або гумової груші, і піддають такій же подальшій обробці, як не забруднені гноєм голки.

Системи для трансфузії лікарських речовин або крові разового користування, але вимушено вживаються повторно. Проводять ретельну обробку для попередження посттрансфузійних реакцій та ускладнень. У сучасних умовах використовують разові системи для трансфузії, стерилізовані у заводських умовах. Систему багаторазового використання відразу після переливання крові або лікарського препарату розбирають – роз'єднують скляні частини, крапельницю та гумові трубки, ретельно промивають проточною водою, розминаючи пальцями гумову трубку (для кращого видалення залишків крові). Частини системи опускають на 2 год в підігрітий до 60 °С спеціальний розчин, що містить 1% розчин гідрокарбонату натрію і 1% розчин аміаку. Потім частини системи промивають проточною водою і кип'ятять у дистильованій воді 30 хв, знову промивають водою, розминаючи гумові трубки, і кип'ятять 20 хв у дистильованій воді. Після цього систему монтують та упаковують для стерилізації.

Гумові рукавиці. У практиці використовують рукавички разового користування, стерилізовані в заводських умовах. При необхідності повторного використання рукавички, забруднені кров'ю, миють, не знімаючи з рук, проточною водою до повного видалення крові, просушують рушником і поміщають на 30 хв в 0,5% розчин аміаку або миючий і дезінфікуючий розчин. Потім ретельно миють проточною водою, вивішують на мотузці для просушування, після чого упаковують для стерилізації.

Гумові рукавички, забруднені гноєм чи кишковим вмістом, підлягають знищенню. За крайньої необхідності їх миють у проточній воді і поміщають у миючий і дезінфікуючий розчин на 1 годину, промиють проточною водою і упаковують для стерилізації. Ці рукавички можуть використовуватися для роботи в гнійній перев'язувальній.

Для контролюповноти видалення крові з предметів, що пройшли передстерилізаційну обробку, використовують бензидинову пробу: на предмет наносять по 3 краплі 1% розчину бензидину та пероксиду водню. Поява синьо-зеленого забарвлення вказує на сліди крові, що залишилася на предметах. У цьому випадку потрібна повторна обробка.

Етап II - укладання та підготовка до стерилізації

Для стерилізації в сухожарових стерилізаторах інструменти поміщають металеві коробки, укладаючи їх вертикально в один шар. Шприци в розібраному вигляді загортають у 2 шари спеціального щільного паперу. Кришки від коробок стерилізують поряд. Останнім часом переважно застосовуються шприци разового користування, стерилізовані в заводських умовах.

Для стерилізації парою під тиском у парових стерилізаторах (автоклавах) інструменти загортають у вафельний рушник або бавовняну тканину у вигляді пакета і укладають на металеву тацю або сітку. Для конкретних типових операцій набір інструментів готують заздалегідь (наприклад, для операцій на легені, серці, кістках, судинах), укладають на спеціальну сітку та загортають у простирадло у вигляді пакета.

Циліндр і поршень шприца укладають окремо в марлеві серветки і загортають у шматок бавовняної тканини у вигляді пакета, який поміщають у стерилізаційну коробку (бікс). При масовій стерилізації шприців в автоклавах (централізована стерилізація) використовують спеціальне укладання, пошите з бавовняної тканини, з кишенями. У кишені поміщають шприци у розібраному вигляді, поруч – голки та пінцет. У кожному укладанні міститься до 5 шприців.

Укладки загортають у бавовняну пелюшку у вигляді пакета і поміщають у стерилізатор.

Сухі гумові рукавички пересипають тальком (зовні та всередині), прокладають марлевими серветками, попарно загортають у серветку та укладають в окремий бікс.

Зібрані системи для переливання крові перевіряють на міцність гумових трубок, щільність їх з'єднання зі скляними деталями і відповідність канюлей павільйонам голки. Систему згортають у вигляді 2-3 кілець, не допускаючи перегину гумових трубок, загортають у велику марлеву серветку, потім - у вафельний рушник і укладають у бікси.

Етап III – стерилізація

Стерилізацію інструментів, шприців (з позначкою на шприці 200 °С), голок, скляного посуду проводять у сухожарових шафах-стерилізаторах(Рис. 4). Предмети вільно укладають на полицях стерилізатора в

Мал. 4.Сухожарова шафа-стерилізатор (схема): а - вид спереду; б – вид збоку; 1 – корпус; 2 – пульт управління; 3 – підставка; 4 - термометри (контактний та транзисторний терморегулятори); 5 - електронагрівальні елементи; 6 – дверцята шафи.

металевих коробках (при знятих кришках) та включають підігрів. При відкритих дверцятах доводять температуру до 80-85 °С і протягом 30 хв просушують - видаляють вологу з внутрішніх поверхонь шафи і предметів, що стерилізуються. Потім дверцята закривають, доводять температуру до заданої (180 °С), підтримуючи її автоматично, і стерилізують протягом 60 хв. Після відключення системи підігріву та зниження температури до 70-50 °С відкривають дверцята шафи і стерильним інструментом закривають кришками металеві коробки з інструментами. Через 15-20 хв (після повного охолодження стерилізатора) камеру розвантажують.

При роботі з сухожаровим стерилізатором необхідно дотримуватись заходів безпеки: апарат повинен бути заземлений, після закінчення стерилізації слід відчиняти дверцята шафи тільки при зниженні температури до 70-50 °С. Забороняється користуватись несправним апаратом.

Стерилізацію інструментів, шприців, систем для переливання крові можна проводити у паровому стерилізаторі(Автоклаві) (рис. 5).

Мал. 5.Паровий стерилізатор (автоклав), схема пристрою: а - вид збоку; б – вид спереду; 1 – термометр; 2 – манометр; 3 – джерело тепла; 4 - вступний кран; 5 – випускний кран; 6 – зовнішня стінка стерилізатора; 7 – внутрішня стінка стерилізатора.

Запаковані предмети укладають у стерилізаційну камеру. Якщо упаковки укладені в бікси, їх решітки повинні бути відкриті. Бікси або інші упаковки укладають вільно, щоб пара розподілялася рівномірно.

Хірургічні інструменти та шприци стерилізують протягом 20 хв при 2 атм 1 що відповідає температурі 132,9 °С. Час початку стерилізації відраховують з досягнення відповідного тиску. Гумові рукавички, системи для переливання крові, гумові дренажні трубки стерилізують при 1,1 атм (температура пари 120 ° С) протягом 45 хв. При розвантаженні автоклава закривають отвори у біксах.

Методи стерилізації в сухожарових та парових стерилізаторах слід розглядати як основні. Метод стерилізації кип'ятінням застосовують у невеликих лікувальних закладах, де немає централізованої стерилізаційної. Використовують стаціонарні або портативні електричні кип'ятильники, в яких можна стерилізувати інструменти, шприци, голки, скло, гумові дренажі, катетери, рукавички.

У кип'ятильник наливають дистильовану воду, для підвищення температури кипіння води та руйнування оболонки бактерій додають 20 г натрію гідрокарбонату на 1 л води (2% розчин). На дно кип'ятильника укладають тонкий простіраний шар з вати з марлею, щоб солі у вигляді накипу осідали на ньому, а не на інструментах.

Інструменти в розібраному вигляді укладають на спеціальні сітки і опускають гачками на дно окропу, залишаючи ручки гачків зовні, і закривають окропом кришкою. Час стерилізації – 40 хв з моменту закипання води. Після закінчення стерилізації сітку з інструментами підхоплюють гачками, дають стекти воді і переносять на спеціальний столик, покритий стерильним простирадлом, складеним у 4 шари. Операційна сестра розкладає інструменти на великому операційному столі.

Шприци та голки стерилізують окремо від інструментів, у розібраному вигляді (кип'ятінням у дистильованій воді без додавання гідрокарбонату натрію) протягом 45 хв. Шприци та голки для люмбальної пункції та внутрішньовенних вливань кип'ятять у двічі дистильованій воді без додавання гідрокарбонату натрію.

Інструменти, шприци та голки, забруднені гноєм, каловими масами, після спеціальної попередньої обробки стерилізують кип'ятінням протягом 90 хв в окремому окропі.

1 1 атм = 1,013 x 10 5 Па

Інструменти, шприци та голки, що застосовуються у хворих з газовою гангреною, підлягають ретельній обробці та подальшій дробовій стерилізації кип'ятінням. Їх кип'ятять протягом 1 години, витягають з кип'ятильника і залишають при кімнатній температурі на 12-24 години (для проростання спор), а потім повторно стерилізують кип'ятінням протягом 1 години (дрібна стерилізація).

Основний метод стерилізації виробів із гуми (дренажів, катетерів, рукавичок) – автоклавування. У виняткових випадках їх кип'ятять протягом 15 хв.

Стерилізацію інструментів та предметів, що не підлягають термічній обробці(ендоскопів, торакоскопів, лапароскопів, апаратів або блоків апаратів для штучного кровообігу, гемосорбції) здійснюють у спеціальному газовому стерилізаторі ГПД-250. Предмети для стерилізації поміщають у герметичну камеру стерилізації (рис. 6), яку наповнюють окисом етилену. Час експозиції - 16 год при температурі 18 °С. Стерилізація може проводитися також сумішшю окису етилену та броміду метилену при температурі 55 °С протягом 6 год.

Стерилізація інструментів та оптичних апаратів (лапароскопів, торакоскопів) може бути проведена у спиртовому розчині хлоргексидину та першомурі. При такій стерилізації (хімічними засобами) застосовують металеві коробки з кришками, що попереджає випаровування препарату та забруднення повітря приміщень; за відсутності спеціального посуду використовують емальований або скляний. Інструменти заливають розчином (щоб він повністю покривав їх) та закривають кришкою.

В екстрених випадках, коли неможливо забезпечити стерилізацію інструментів жодним із зазначених способів, використовують метод випалювання. У металевий таз або лоток наливають 15-20 мл спирту, кілька інструментів укладають на дно і підпалюють спирт. Метод випалювання недостатньо надійний, пожежо- та вибухонебезпечний (наявність кисню, пари наркотичних речовин у повітрі приміщень), тому до нього вдаються у виняткових випадках, суворо дотримуючись заходів пожежної безпеки.

Ріжучі інструменти (скальпелі, ножиці) при стерилізації звичайними затупляються методами, тому її проводять практично без термічної обробки. Після передстерилізаційної підготовки інструменти занурюють у 96% розчин етанолу на 30 хв або потрійний розчин на 3 год. Допускається лише короткострокове кип'ятіння ріжучих інструментів. Скальпелі укладають в окрему сітку, їх леза обгортають марлею і кип'ятять у дистильованій воді без додавання гідрокарбонату натрію протягом 10 хв, потім поміщають у 96% розчин етанолу на 30 хв.

Стерильний матеріал зберігають у спеціальному приміщенні. Не допускається зберігання в одному приміщенні нестерильних та стерильних матеріалів. Стерильність матеріалу в біксах (якщо вони не відкривалися) зберігається протягом 48 годин. вони можуть зберігатися у цих біксах до 3 діб. При централізованій стерилізації шприци зберігають стерильність протягом 25 днів.

Стерилізація перев'язувального матеріалу, операційної білизни Етап I – передстерилізаційна підготовка матеріалу

До перев'язувального матеріалу відносяться марлеві кульки, серветки, тампони, турунди, бинти. Застосовують їх під час операції та перев'язки з метою осушення рани, зупинки кровотечі, дренування чи тампонади рани. Перев'язувальний матеріал готують з марлі та вати, рідше – з віскози та лігніну. Він повинен мати такі властивості:

1) бути біологічно та хімічно інтактним, не надавати негативного впливу на процеси загоєння;

2) мати гарну гігроскопічність;

3) бути мінімально сипучим, так як нитки, що відокремилися, можуть залишитися в рані як сторонні тіла;

4) бути м'яким, еластичним, не травмувати тканини;

5) легко стерилізуватись і не втрачати при цьому своїх властивостей;

6) бути дешевим у виробництві (з урахуванням великої витрати матеріалу); норма витрати за рік на 1 хірургічне ліжко – 200 м марлі та 225 бинтів; тільки на таку невелику операцію, як апендектомія, витрачається близько 7 м марлі.

Перев'язувальний матеріал готують із марлі, попередньо розрізаної на шматочки. Марлю складають, підгортаючи краї всередину, щоб не було вільного краю (з нього можуть обсипатися волокна тканини). Матеріал заготовляють про запас, поповнюючи його запаси в міру витрачання. Для зручності підрахунку матеріалу, що витрачається під час операції, його укладають перед стерилізацією певним чином: кульки - в марлеві мішечки по 50-1000 штук, серветки - у зв'язки по 10 штук. Перев'язувальний матеріал, крім бинтів, які не забруднені кров'ю, після застосування спалюють.

До операційної білизни відносяться хірургічні халати, простирадла, рушники, маски, шапочки, бахіли. Матеріалом для виготовлення служать бавовняні тканини - бязь, полотно. Операційна білизна багаторазового користування повинна мати спеціальну мітку та здаватися у прання окремо від іншої білизни, у спеціальних мішках. У халатів не повинно бути кишень, поясів; простирадла повинні були підшиті. Халати, простирадла, пелюшки, рушники для стерилізації складають у вигляді рулонів, щоб їх можна було легко розгорнути при використанні.

Етап II - укладання та підготовка матеріалу до стерилізації.

Перев'язувальний матеріал та операційну білизну укладають у бікси (рис. 7). За відсутності біксів допускається стерилізація у полотняних мішках.

При універсальному укладанні в бікс (мішок) поміщають матеріал, призначений для однієї невеликої типової операції (апендектомії, грижосічення, флебектомії та ін). При цілеспрямованому укладанніу бікс (мішок) закладають необхідний набір перев'язувального мате-

Мал. 7.Бікс Шіммельбуша.

ріалу та операційної білизни, призначеної для конкретної операції (пневмонектомії, резекції шлунка та ін). При видовому укладаннів бікс укладають певний вид перев'язувального матеріалу або білизни (бікс із халатами, бікс із серветками, бікс із кульками тощо).

Спочатку перевіряють справність бікса, потім на його дно поміщають розгорнуте простирадло, кінці якого знаходяться зовні. Перев'язувальний матеріал укладають вертикально по секторах пачками або пакетами. Матеріал укладають нещільно, щоб забезпечити доступ пари, всередину поміщають індикатори режиму стерилізації (максимальні термометри, речовини, що плавляться, або пробірки з тест-мікробом), краї простирадла загортають, бікс закривають кришкою і защіплюють замок. До кришки бікса прикріплюють бирку з клейонки із зазначенням дати стерилізації та прізвища, що її здійснювало.

При стерилізації в мішку перев'язувальний матеріал або білизну укладають нещільно, мішок зав'язують тасьмами, опускають його в інший мішок і зав'язують. При необхідності використання матеріалу мішок перешкодять на табурет, санітарка розв'язує верхній мішок, розводить краї і зсуває донизу. Операційна сестра розв'язує внутрішній мішок стерильними руками, розкриває його та витягує матеріал.

Етап III – стерилізація

Експлуатація автоклава допускається лише за наявності дозволу Інспекції котлонагляду з відміткою у паспорті апарату. До роботи з автоклавом допускаються особи, які здали технічний мінімум з експлуатації автоклава та мають відповідний дозвіл. Робота з автоклавом вимагає точного дотримання інструкції з експлуатації апарату. Необхідно дотримуватися загальні правила техніки безпеки:

Обов'язково заземляти паровий стерилізатор із електричним підігрівом;

Не братися до роботи на несправному апараті;

Під час роботи не залишати апарат без нагляду;

Не доливати воду у вирву під час роботи стерилізатора;

Після закінчення стерилізації відключати нагрівач від мережі та прикривати вентиль впуску пари в стерилізаційну камеру з пароутворювача;

Відкривати кришку камери стерилізації тільки після того, як стрілка манометра опуститься до нуля.

Відлік часу стерилізації починається з досягнення заданого тиску. Перев'язувальний матеріал та операційну білизну стерилізують протягом 20 хв при тиску 2 атм (температура 132,9 ° С).

Етап IV – зберігання стерильного матеріалу

Після закінчення стерилізації та сушіння білизни стерилізаційну камеру розвантажують, бікси виймають, відразу закривають грати та переносять їх на спеціальний стіл для стерильного матеріалу. Зберігають бікси у шафах під замком у спеціальній кімнаті. Допустимий термін зберігання перев'язувального матеріалу та білизни, якщо бікс не розкривався, - 48 годин з моменту закінчення стерилізації. Матеріал та білизна, стерилізовані в мішках, зберігають не більше 24 год.

Контроль стерильності

Контроль стерильності матеріалу та режиму стерилізації в автоклавах проводять прямим та непрямим (непрямим) способами. Прямий спосіб – бактеріологічний: посів з перев'язувального матеріалу та білизни або використання бактеріологічних тестів. Посів роблять наступним чином: в операційній розкривають бікс, маленькими шматочками марлі, зволоженою ізотонічним розчином хлориду натрію, кілька разів проводять по білизні, після чого шматочки марлі опускають у пробірку, яку направляють у бактеріологічну лабораторію.

Для бактеріологічних тестів використовують пробірки з відомою непатогенною спороносною культурою мікроорганізмів, які гинуть при певній температурі. Пробірки вкладають углиб бікса, а після закінчення стерилізації витягують і направляють у лабораторію. Відсутність зростання бактерій свідчить про стерильності матеріалу. Цей тест проводять 1 раз на 10 днів.

Непрямі методи контролю стерильності матеріалу застосовують завжди при кожній стерилізації. Для цього використовують речовини з певною точкою плавлення: бензойну кислоту (120 °С), резорцин (119 ° С), антипірин (110 ° С). Ці речовини випускаються у ампулах. Їх застосовують також у пробірках (по 0,5 г), закритих марлевою пробкою. У бікс між шарами стерилізованого матеріалу закладають 1-2 ампули. Розплавлення порошку і перетворення його на суцільну масу вказують на те, що температура в біксі дорівнювала точці плавлення контрольної речовини або перевищувала її. Для контролю режиму стерилізації в сухожарових стерилізаторах використовують порошкоподібні речовини з вищою точкою плавлення: аскорбінову кислоту (187-192 ?С), янтарну кислоту (180-184 ?С), пілокарпіну гідрохлорид (200 ?С), тіомочевину (18 .

Об'єктивнішим з непрямих методів контролю режиму стерилізації є термометрія. У кожен бікс між стерилізованим

матеріалом укладають 1-2 термометри. Їх показники відображають максимальну температуру, але не вказують час експозиції (протягом якого періоду ця температура підтримувалася в біксі), у зв'язку з чим цей метод не виключає прямого контролю стерильності з використанням бактеріологічних тестів.

Стерилізація апаратів для інгаляційного наркозу

Апарати для штучної вентиляції легень та інгаляційного наркозу можуть бути причиною перехресного інфікування хворих та поширення внутрішньолікарняної інфекції. Інфікування дихальних шляхів хворих може призвести до розвитку в післяопераційному періоді запальних ускладнень, що протікають у вигляді пневмонії, бронхіту, трахеїту, фарингіту. У зв'язку з цим знезараження анестезіологічної та дихальної апаратури – один із важливих заходів асептики, спрямоване на попередження контактного та інгаляційного інфікування дихальних шляхів хворого.

Для запобігання подібним ускладненням необхідно виконувати такі основні рекомендації.

1. Ендотрахеальні трубки повинні бути разового користування, стерилізація їх повинна проводитися холодним способом у заводських умовах.

2. Після наркозу, проведення штучної вентиляції легких апаратів, елементи дихального контуру піддають обробці антисептичними хімічними засобами. Апарати обробляють у зібраному вигляді. Може бути використаний 0,5% спиртовий розчин хлоргексидину: 1 мл 20% водного розчину хлоргексидину розчиняють у 40 мл 96% розчині етанолу. Суміш заливають у випарник наркозного апарату або зволожувач апарату для штучної вентиляції легень. Вентиляцію проводять по напівзакритому контуру протягом 1 години при швидкості газотоку 2 л/хв. Потім залишки антисептика видаляють, апарат провітрюють протягом 15 хв по напіввідкритому контуру.

Як антисептик у подібних ситуаціях можна використовувати 40% водний розчин формальдегіду (формалін). Для цього випарник або зволожувач заливають 100 мл формаліну і проводять вентиляцію протягом 20 хв. Потім видаляють залишки формаліну, заливають розчин аміаку та продовжують вентиляцію до повного зникнення запаху аміаку.

Для стерилізації апаратів у зібраному вигляді можна застосувати газовий метод (з використанням окису етилену) або γ-випромінювання.

3. Якщо апарати були застосовані у хворих з гнійними захворюваннями, туберкульозом легких або дихальних шляхів, розбирають дихальний контур (знімають шланги, приєднувальні елементи, кришки клапанних коробок, дихальний мішок, адсорбер). Усі деталі обов'язково промивають під струменем теплої води, потім замочують у гарячому миючому розчині (див. Стерилізація інструментів)на 15 хв. У цьому ж розчині кожну деталь миють ватно-марлевим тампоном протягом 30 с, після чого прополіскують проточною, а потім дистильованою водою. Власне стерилізаційну обробку деталей проводять 0,5% водним розчином хлоргексидину, поміщаючи в ємності на 30 хв, чи 3% розчином пероксиду водню (80 хв), чи 3% розчином формальдегіду (30 хв). У разі при інфікуванні мікобактеріями туберкульозу експозицію збільшують до 90 хв. Оптимальний варіант - використання у подібних ситуаціях пластикових шлангів, масок одноразового користування.

Після обробки антисептиком деталі ретельно промивають стерильною водою протягом 10 хв, сушать та зберігають в асептичних умовах до використання.

Стерилізація ендоскопічної апаратури

Проблема інфекції при ендоскопічних дослідженнях стоїть гостро через небезпеку зараження хворих і персоналу вірулентними мікроорганізмами.

Основні етапи стерилізації ендоскопічних приладів та інструментів – їх механічне очищення, промивання, передстерилізаційна обробка та стерилізація, просушування та зберігання.

Для очищення ендоскопів використовують миючі розчини (див. Стерилізація інструментів).

Після закінчення ендоскопічного дослідження з ендоскопа негайно видаляють забруднення (шлунковий, кишковий сік, слиз, кров та ін.) механічним шляхом з використанням миючих засобів: із зовнішньої поверхні - за допомогою тканинних серветок, з каналів (біопсійного, операційного) - спеціальної також шляхом подачі в них достатньої кількості повітря, води чи розчину нейтрального мила; тверді ендоскопи перед очищенням розбирають на комплектуючі деталі.

Для обробки ендоскопів застосовують 0,5% водний або спиртовий розчин хлоргексидину, 70% розчин етанолу, 2,5% розчин глутарового альдегіду, препарат Сайдекс, 3% і 6% розчини пероксиду водню при температурі 20?2 ?С.

Крім методу занурення, можливе також 3-кратне протирання серветками зовнішньої поверхні робочої частини ендоскопа (послідовно спочатку однією серветкою, інтенсивно змоченою в антисептичному розчині, потім після заповнення каналів ендоскопа розчином на 15 хв - другої та третьої).

Частини ендоскопа обробляють розчинами антисептиків шляхом занурення в емальовану або скляну ємність, закриту кришкою, також занурюють деталі жорстких ендоскопів (за винятком оптичних частин приладів і гнучких частин фіброендоскопів). В останні роки з'явилися нові так звані надгерметичні моделі фіброскопів, які можна повністю занурювати в антисептичний розчин. Канали заповнюють цим розчином за допомогою шприца або електровідсмоктування.

Розроблено спеціальні установки (миючі машини) для передстерилізаційного очищення та стерилізації гнучких ендоскопів, що відрізняються обсягом дезінфікуючого засобу, що заливається у спеціальну ванну.

Залишки антисептичних засобів видаляють з ендоскопічного обладнання дистильованою водою, пропускаючи її через канали ендоскопа і обмиваючи його зовні. Потім шляхом неодноразової подачі повітря через ендоскопні канали видаляють залишки води.

Стерилізацію ендоскопічної апаратури можна проводити в камері для газової стерилізації з використанням окису етилену або суміші окису етилену та броміду метилену (див. Стерилізація інструментів).

Ендоскопи, поміщені в стерильні мішки із щільної бавовняної тканини, зберігають у вертикальному положенні у спеціальних шафах.

Підготовка рук до операції

Обробка рук – важливий засіб профілактики контактної інфекції. Лікарі-хірурги, операційні та перев'язувальні сестри повинні постійно дбати про чистоту рук, доглядати шкіру та нігті. Найбільша кількість мікроорганізмів накопичується під нігтями, у ділянці нігтьових валиків, у тріщинах шкіри. Догляд за руками передбачає попередження тріщин і омозолелостей шкіри, підстригання нігтів (вони мають бути короткими), видалення задирок. Роботу, пов'язану із забрудненням та інфікуванням шкіри рук, потрібно виконувати у рукавичках. Правильний догляд за руками слід розглядати як етап їх підготовки до операції. Обробка рук у будь-який спосіб починається з механічного очищення.

До класичних способів обробки рук належать способи Фюрбрінгера, Альфельда, Спасокукоцького-Кочергіна. Способи Фюрбрінгера, Альфельда мають лише історичне значення. Спосіб Спасоку-коцького-Кочергінаможе бути використаний як вимушений, коли не можна застосувати сучасні методи. Спосіб передбачає механічне очищення рук 0,5% розчином аміаку. Руки миють у двох тазах по 3 хв серветкою; виконують послідовно рухи, як при миття щіткою, починаючи з пальців лівої руки. У першому тазі руки миють до ліктів, у другому - до межі верхньої та середньої третини передпліччя. Після закінчення миття руки обполіскують розчином аміаку і кисті піднімають догори так, щоб краплі води стікали до ліктів. З цього часу кисті рук постійно знаходяться вище за передпліч. Шкіру рук осушують стерильними серветками: спочатку обидві кисті (цю серветку кидають), потім послідовно нижню та середню третину передпліч.

Знезаражують шкіру серветками, змоченими 96% спиртом, обробляючи двічі по 2,5 хв кисті та нижню третину передпліч, потім - кінці пальців та нігтьові валики; нігтьові ложа та складки шкіри пальців змащують 5% спиртовим розчином йоду.

Сучасні способи обробки рук передбачають їх очищення шляхом миття проточною водою з милом або за допомогою рідких миючих засобів та подальшу обробку хімічними антисептиками.

Обробка рук першомуром (Препаратом С-4). Першомур - суміш, що складається з мурашиної кислоти та пероксиду водню. Спочатку готують основний розчин, до складу якого входять 81 мл 85% мурашиної кислоти та 171 мл 33% розчину пероксиду водню. Ці частини змішують у скляній бутлі з притертою пробкою і поміщають у холодильник на 2 години, періодично струшуючи сулію. При взаємодії мурашиної кислоти та пероксиду водню утворюється надмурашина кислота, що чинить сильну бактерицидну дію. Із зазначеної кількості основного розчину можна приготувати 10 л робочого розчину, розбавивши дистильованою водою. Робочий розчин придатний для застосування протягом дня. При приготуванні розчину необхідно працювати в гумових рукавичках для запобігання опікам концентрованим розчином мурашиної кислоти або пероксиду водню. Обробка рук передбачає їхнє попереднє миття протягом 1 хв проточною водою з милом. Потім кисті та передпліччя до рівня середньої третини миють серветками в тазу з розчином першомуру протягом 1 хв і осушують стерильними серветками. В одному тазі обробку рук можуть робити 5 осіб.

Обробка рук хлоргексидином. Препарат випускається як 20% водного розчину. Для обробки рук готують 0,5% спиртовий розчин: 500 мл 70% спирту додають 12,5 мл 20% розчину хлоргексидину. Попередньо миють руки проточною водою з милом, осушують стерильними серветками або рушником, а потім протягом 2-3 хв протирають марлевим тампоном, змоченим приготованим розчином.

Обробка рук препаратами АХД, євросепт. Ці засоби містять антисептики, як етанол, хлоргексидин, ефір поліольної жирної кислоти. Декілька мілілітрів розчину виливають на руки і протирають шкіру рук до середньої третини передпліч двічі по 2-3 хв. Попередньо миють руки протягом 1 хв.

Прискорені способи обробки рук застосовують у амбулаторній практиці або у вимушених (наприклад, військово-польових) умовах. Для прискореного знезараження рук використовують плівкоутворюючий препарат церигель, що відрізняється сильною бактерицидною дією. До його складу входять полівінілбутирол та 96% розчин етанолу. Руки миють водою з милом, ретельно осушують. На долоню наливають 3-4 мл церигеля і ретельно протягом 10 с змочують їм пальці, нігтьові ложа та валики, кисті та нижню частину передпліччя. Напівзігнуті пальці тримають у розведеному положенні протягом 2-3 хв, поки на шкірі не утворюється плівка церигеля, що має захисні та бактерицидні властивості. Після закінчення операції плівка легко знімається марлевими кульками, змоченими спиртом.

Обробка рук може бути виконана шляхом протирання шкіри 96% розчин етанолу протягом 10 хв (спосіб Бруна) або 2% спиртовим розчином йоду протягом 3 хв.

Підготовка операційного поля

Попередня підготовка місця передбачуваного операційного розрізу (операційного поля) починається напередодні операції та включає загальну гігієнічну ванну, зміну білизни. У день операції проводять збривання волосся сухим способом у місці операційного доступу, потім шкіру протирають спиртом.

Перед хірургічним втручанням на операційному столі поле операції широко змащують 5% спиртовим розчином йоду. Безпосередньо місце операції ізолюють стерильною білизною і знову змащують 5% спиртовим розчином йоду. Перед накладенням та після накладання швів на шкіру її обробляють тим самим спиртовим розчином. Цей спосіб відомий як спосіб Гроссіха-Філончікова. Для обробки

операційного поля використовують також препарати йоду, наприклад йод-+калію йодид, повідон-йод; застосовують їх за тією самою методикою, що і розчин йоду.

При непереносимості йоду шкірою у дорослих хворих і в дітей віком обробку операційного поля проводять 1% спиртовим розчином діамантового зеленого (спосіб Баккала).

Для обробки операційного поля використовують 0,5% спиртовий розчин хлоргексидину, як для обробки рук хірурга перед операцією.

При екстреній операції підготовка операційного поля полягає у збриванні волосся, обробці шкіри 0,5% розчином аміаку, а потім одним із описаних вище способів.

ПРОФІЛАКТИКА ІМПЛАНТАЦІЙНОГО ІНФІКУВАННЯ РАН

Під імплантацієюрозуміють використання, вживлення в організм людини різних матеріалів, тканин, органів, протезів.

Інфікування повітряним чи контактним шляхом обумовлюється короткостроковим впливом під час виконання тих чи інших хірургічних маніпуляцій (перев'язки, операції, лікувальних маніпуляцій, діагностичних методів). При впровадженні мікрофлори з матеріалами, що імплантуються (імплантаційне інфікування організму) вона знаходиться в організмі людини протягом усього періоду перебування імплантату. Останній, будучи стороннім тілом, підтримує запальний процес, що розвивається, і лікування такого ускладнення буде безуспішним доти, поки не відбудеться відторгнення або видалення імплантату (лігатури, протеза, органу). Можлива з самого початку (за рахунок утворення сполучнотканинної капсули) ізоляція мікрофлори разом з імплантатом з утворенням дрімає інфекції, яка може проявитися через тривалий час (через місяці, роки).

До матеріалів, що імплантуються в організм людини, відносяться шовний матеріал, металеві скріпки, дужки, а також протези судин, суглобів, полотно з лавсану, капрону та інших матеріалів, тканини людини та тварин (судини, кістки, тверда мозкова оболонка, шкіра), органи (нирка, печінка, підшлункова залоза та ін), дренажі, катетери, шунти, кава-фільтри, судинні спіралі та ін.

Усі імплантати мають бути стерильними. Стерилізацію їх проводять різними способами (залежно від виду матеріалу): γ-випромінюванням, автоклавуванням, хімічною, газовою стерилізацією,

кип'ятінням. Багато протезів випускають у спеціальних упаковках, стерилізовані в заводських умовах γ-випромінюванням.

Найбільше значення у виникненні імплантаційної інфекції має шовний матеріал.Існує понад 40 його видів. Для з'єднання тканин під час операції використовують нитки різного походження, металеві скріпки, дужки, дріт.

Застосовують як нитки, що розсмоктуються, так і не розсмоктуються. Розсмоктуютьсянатуральними нитками є нитки із кетгуту. Подовження термінів розсмоктування кетгуту досягають імпрегнацією ниток металами (хромований, срібний кетгут). Використовують синтетичні нитки з дексону, вікрилу, окцилону та ін. нерозсмоктуєтьсянатуральним ниткам відносяться нитки з натурального шовку, бавовни, кінського волосу, льону, до синтетичних - нитки з капрону, лавсану, дакрону, нейлону, фторлону та ін.

Для з'єднання (зшивання) тканин застосовують атравматичнийшовний матеріал. Він є шовною ниткою, запресованою в голку, тому при проведенні ниток через прокольний канал тканини додатково не травмуються.

Шовний матеріал повинен відповідати наступним основним вимогам:

1) мати гладку, рівну поверхню та не викликати при проколі додаткового пошкодження тканин;

2) мати хороші маніпуляційні властивості - добре ковзати в тканинах, бути еластичним (достатня розтяжність попереджає здавлення і некроз тканин при їх наростаючому набряку);

3) бути міцним у вузлі, не мати гігроскопічних властивостей і не набухати;

4) бути біологічно сумісним з живими тканинами і не чинити алергічного впливу на організм;

5) руйнація ниток має збігатися з термінами загоєння рани. Нагноєння ран відбувається значно рідше при використанні

шовних матеріалів, що мають антимікробну активність за рахунок введених в їх структуру протимікробних препаратів (летилан-лавсанові, фторлонові, ацетатні та інші нитки, що містять нітро-фуранові препарати, антибіотики тощо). Синтетичні нитки, що містять антисептичні засоби, мають всі переваги шовних матеріалів як таких і в той же час мають антибактеріальну дію.

Шовний матеріал стерилізують γ-випромінюванняму заводських умовах. Атравматичний шовний матеріал випускають і стерилізують у спеціальних

ній упаковці, звичайний матеріал - в ампулах. Атравматичні нитки в упаковці та ампульовані мотки шовку, кетгуту, капрону зберігають за кімнатної температури і використовують при необхідності. Металевий шовний матеріал (дріт, дужки) стерилізують в автоклавіабо кип'ятінням,лляні або бавовняні нитки, нитки з лавсану, капрону - в автоклаві. Капрон, лавсан, льон, бавовна можна стерилізувати за способом Кохера.Це вимушений метод, і він передбачає попереднє ретельне механічне очищення шовного матеріалу гарячою водою з милом. Мотки миють у мильній воді протягом 10 хв, двічі змінюючи воду, потім відмивають від миючого розчину, висушують стерильним рушником і намотують на спеціальні скляні котушки, які поміщають у банки з притертою пробкою та заливають діетиловим ефіром на 24 год для обезжир чого перекладають у банки з 70% спиртом на такий самий термін. Після вилучення зі спирту шовк кип'ятять протягом 10-20 хв в розчині дихлориду ртуті 1:1000 і перекладають в банки, що герметично закриваються, з 96% спиртом. Через 2 доби проводять бактеріологічний контроль, при негативному результаті сівби матеріал готовий до застосування. Синтетичні нитки можна стерилізувати кип'ятінням протягом 30 хв.

Стерилізація кетгуту. У заводських умовах кетгут стерилізують -променями, в основному саме такі нитки використовують у хірургії. Однак можна простерилізувати кетгут у лікарняних умовах, коли неможливо використовувати матеріал, стерилізований в заводських умовах. Стерилізація кетгуту хімічним способом передбачає попереднє знежирення, для чого згорнуті кільцями нитки кетгуту поміщають у банки, що герметично закриваються, з діетиловим ефіром на 24 ч. При стерилізації по Клаудіусудіетиловий ефір з банки зливають, кільця кетгуту заливають на 10 діб водним розчином Люголя (йоду чистого - 10 г, йодиду калію - 20 г, дистильованої води - до 1000 мл), потім замінюють розчин Люголя свіжим і залишають у ньому кетгут . Після цього розчин Люголю заміняють 96% спиртом. Через 4-6 діб роблять посів на стерильність.

Метод Губарєвапередбачає стерилізацію кетгуту спиртовим розчином Люголя (чистого йоду та йодиду калію – по 10 г, 96% розчин етанолу – до 1000 мл). Після знежирення діетиловий ефір зливають і заливають кетгут розчином Люголя на 10 діб, після заміни розчину на новий кетгут залишають у ньому ще на 10 діб. Після бактеріологічного контролю за сприятливих результатів дозволяють використання матеріалу.

Стерилізація протезів, конструкцій, матеріалів, що зшивають. Метод стерилізації за умов лікарні визначається видом матеріалу, з якого виготовлений імплантат. Так, металеві конструкції (скріпки, дужки, дріт, пластинки, штифти, цвяхи, гвинти, шурупи, спиці) стерилізують при високій температурі в сухожаровій шафі, автоклаві, кип'ятінням (як неріжучі хірургічні інструменти). Протези складної конструкції, що складаються з металу, пластмас (клапани серця, суглоби) стерилізують за допомогою хімічних антисептичних засобів (наприклад, в розчині хлоргексидину) або в газових стерилізаторах.

Профілактика імплантаційної інфекції при трансплантації органів прокуратури та тканин передбачає взяття органів у стерильних умовах, тобто. наближених до роботи операційних. Ретельне дотримання асептики при цьому передбачає підготовку рук та одягу хірургів, стерильну операційну білизну, обробку операційного поля, стерилізацію інструментів тощо. Орган, витягнутий у стерильних умовах (після промивання його стерильним розчином, а при необхідності відмивання судин від крові та проток - від біологічних рідин), поміщають у спеціальний герметичний стерильний контейнер, обкладений льодом, і доставляють до місця трансплантації.

Протези з лавсану, капрону та інших синтетичних матеріалів (судини, клапани серця, сітку для зміцнення черевної стінки при грижі перетину та ін) стерилізують кип'ятінням або поміщаючи їх в антисептичні розчини. Протези, стерилізовані в розчині антисептика, слід ретельно промивати стерильним ізотонічним розчином натрію хлориду перед імплантацією їх в організм людини.

Госпітальна інфекція

Госпітальна(нозокоміальна) інфекція -хвороби чи ускладнення захворювань чи операцій, виникнення яких пов'язані з інфікуванням хворих у хірургічному стаціонарі.

Первинне джерело інфекції – хворі з гнійними захворюваннями.

Мікроорганізми через предмети, повітря, білизну можуть у хірургічному стаціонарі переходити від одного хворого до іншого. Найчастіше зустрічаються стафілокок, кишкова паличка, протей, клебсієли, синьогнійна паличка. Мікробна флора відрізняється високою стійкістю до антибактеріальних засобів. У ослаблених, оперованих хворих ця флора може спричинити розвиток гнійних ускладнень. Інфікування можливе як з екзогенних, так і з ендогенних джерел, куди госпітальна флора.

потрапила раніше: носоглотка, зів, шкіра хворого. Можливий розвиток масового захворювання (ускладнення) – спалах госпітальної інфекції.

Для боротьби з цією інфекцією велике значення мають організаційні заходи: суворий санітарний режим відділення, закриття відділень на ретельну санітарну обробку при спалаху інфекції, скорочення термінів до- та післяопераційного перебування хворих у стаціонарі, раціональна антибактеріальна терапія (зміна антибактеріальних засобів, бактеріологічний контроль ), використання комбінованих методів антисептики, застосування закритих методів дренування та ін.

Проблеми ВІЛ-інфікування у хірургії

Поширення СНІДу серед населення створює загрозу зараження персоналу хірургічних стаціонарів, що контактує з кров'ю інфікованих пацієнтів під час операцій, перев'язок, вливань, ін'єкцій, пункцій, взяття крові для дослідження при діагностичних процедурах та ін.

Профілактичні заходи передбачають своєчасне виявлення інфікованих хворих, навіщо всіх пацієнтів хірургічних стаціонарів обстежують на ВІЛ. З метою виявлення та ізоляції хворих на СНІД при клінічному обстеженні враховують такі прояви хвороби, як пневмоцистоз, пневмонія, саркома Калоші, наявність імунодефіциту, лімфаденопатія, діарея, схуднення, кандидоз дихальних шляхів. Екстрене дослідження крові на ВІЛ-антиген дозволяє підтвердити або відкинути діагноз у хворих цієї групи.

Правила особистої безпеки персоналу передбачають (відповідно до наказу?86 від 30.08.89 МОЗ СРСР) необхідність роботи в гумових рукавичках при виконанні будь-яких маніпуляцій у хірургічних стаціонарах, будь-якому контакті з кров'ю та біологічними рідинами хворих. Крім того, під час операції у ВІЛ-інфікованих необхідно застосовувати спеціальні маски та окуляри; при попаданні крові, біологічних рідин на різні предмети, шкіру, слизові оболонки потрібна обробка їх антисептиками. Хірургічні інструменти після використання замочують у 3% розчині хлораміну (30 хв) або 6% розчині пероксиду водню (90 хв) з наступною звичайною передстерилізаційною обробкою.

Велике значення для профілактики має широке застосування шприців, інструментів, систем внутрішньовенного вливання разового користування.

АНТИСЕПТИКА

Розрізняють механічну, фізичну, хімічну та біологічну антисептику.

Механічна антисептика

Основа механічної антисептики - видалення з інфікованої, гнійної рани, гнійного вогнища нежиттєздатних тканин, гною, фібрину, що є довкіллям і живлення мікробної флори. Видалення девіталізованих тканин, хоч і є не прямою, а опосередкованою дією на мікрофлору, сприяє стерилізації рани.

Варіанти механічної антисептики передбачають первинну хірургічну обробкуінфікованих ран, метою якої є висічення країв, стінок та дна рани в межах здорових тканин (див. Рани).Разом з тканинами, що висікаються, з рани видаляють крововиливи, гематоми, згустки крові, сторонні мікротіла, а також мікрофлору, що знаходиться в них. Чим раніше виконано таку операцію, тим більша ймовірність добитися стерильності рани.

Якщо ж в інфікованій рані почала розвиватися мікробна флора, що можливо при несвоєчасній або неповній первинній хірургічній обробці, або рана з самого початку має гнійний характер (після розкриття абсцесів, флегмон), застосовують вторинну хірургічну обробкурани. Висічення країв, стінок, дна рани при цьому не виробляють, а видаляють з неї механічним шляхом (скальпелем, ножицями, вакуумуванням, промиванням струменем рідини під тиском) некротизовані тканини, гній, фібрин, розкривають гнійні кишені, евакуюють затіки. При цьому видаляється також мікробна флора і, хоча стерильності рани досягти не вдається, кількість мікрофлори в ній зменшується і створюються сприятливі умови для загоєння рани.

Будь-яка перев'язка рани має елементи механічної антисептики. (Туалет рани).Видалення просочених кров'ю, гноєм пов'язок, тампонів, промивання рани струменем рідини, видалення некротизованих тканин, що вільно лежать, секвестрів, просушування рани кульками і тампонами сприяють видаленню з неї мікробної флори, кількість якої зменшується в 10-20 разів.

Фізична антисептика

Методи фізичної антисептики ґрунтуються на використанні законів капілярності, гігроскопічності, дифузії, осмосу, принципу сифону, впливу енергії лазера, ультразвуку.

Дренуванняран, гнійних вогнищ (абсцесів, емпієм) передбачає створення умов для відтоку ранового відокремлюваного у зовнішнє середовище (у пов'язку, спеціальний посуд з антисептичними розчинами). Як дренаж при лікуванні ран застосовують марлевий тампон. Тампони різних розмірів готують із смужки марлі і рихло вводять у рану. Завдяки своїй гігроскопічності тампон всмоктує кров, ексудат, гній. Які дренують його властивості виявляються до 8 год, після чого він може перетворитися на «пробку», що закупорює рану і порушує відтік ексудату з неї. Щоб підвищити дрінуючі властивості пов'язки, тампони змочують гіпертонічним(5-10%) розчиномхлориду натрію. Це сприяє створенню високого осмотичного тиску, що призводить до збільшення відтоку рідини з рани пов'язку.

Крім звичайного тампона, застосовують тампон фон Микулича-Радецького.У рану вводять велику марлеву серветку з ниткою, пришитою до її середини. Серветку укладають на дно та стінки рани, утворюється «мішок», який заповнюють марлевими тампонами. Коли тампони просочуються рановим відділяється, їх видаляють, залишаючи марлеву серветку, і утворену порожнину заповнюють новими тампонами. Тампони змінюють кілька разів - до припинення відтоку гнійного відокремлюваного, після чого потягуванням за нитку видаляють серветку.

Дренування можна проводити за допомогою гумових, хлорвінілових та інших трубок різного діаметру, які вводять у рану, порожнину абсцесу, суглоба (при гнійному артриті), плеври (при гнійному плевриті), черевну порожнину (при гнійному перитоніті). Гній, що утворюється, продукти розпаду тканин, а з ними і мікроорганізми по одному або декільком дренажам виділяються в пов'язку. Дренаж може бути з'єднаний трубкою з судиною, в яку наливають якийсь антисептичний розчин; тоді ранове відділення виділятиметься в судину, зменшуючи тим самим забруднення пов'язки. Через дренаж у рану чи гнійну порожнину вводять хімічні антисептичні засоби, антибіотики, протеолітичні ферменти.

Для більш ефективного промивання ран і гнійних порожнин в них (крім дренажу для відтоку ранового відділяється) вставляють іншу трубку, по ній вводять розчин антибактеріального препарату, разом з яким продукти розпаду тканин, гній, кров і фібрин видаляються з рани по дренажу (мал. 8 ). Таким чином, комбінуючи методи фізичної та хімічної антисептики, створюють умови для проточно-промивного дренуванняЦей метод застосовують також при лікуванні гнійного плевриту та перитоніту. Для підвищення ефективності методу як промивний розчин використовують протеолітичні ферменти, які спо-

Мал. 8.Промивне дренування (а), активна аспірація із рани (б).

сприяють більш швидкому розплавленню нежиттєздатних тканин, гною, фібрину (метод проточного ферментативного діалізу).

Якщо дренована порожнина герметична (рана, зашита швами, емпієма плеври, гнійний артрит, порожнина абсцесу), застосовують активну аспірацію (вакуумне дренування).Розрідження в системі може бути створене за допомогою шприца Жане, яким видаляють повітря з герметичної банки з підключеним до неї дренажем, або за допомогою водоструминного відсмоктування або трибанкової системи. Це найбільш ефективний метод дренування, він також сприяє зменшенню порожнини рани, швидшому її закриттю та ліквідації запалення, а при емпіємі плеври - розправленню підтисненого ексудатом легені.

Асептичні умови в рані можна створити, помістивши кінцівку з раною або хворого (при великих опіках) в спеціальну камеру, в якій за допомогою установки, показаної на рис. 9, створюють бактеріальне середовище.

Мал. 9.Установка для лікування ран в бактеріальному середовищі (схема). 1 – вхідний фільтр; 2 – компресор; 3 – бактеріальний фільтр; 4 – повітропровід; 5 – ізолятор (камера); 6 – замок ізолятора.

Лазерне випромінювання у вигляді променя малої потужності має бактерицидний ефект і не надає шкідливого впливу на тканини. Застосовують в основному вуглекислотний лазер, сфокусований промінь якого випаровує на некротизовані тканини і мікроорганізми. На стінках та дні рани утворюється дуже тонка коагуляційна плівка, що перешкоджає проникненню в тканини мікроорганізмів та їх токсинів. Використовують лазерне випромінювання на лікування ран.

Бактерицидний вплив має ультразвук низької частоти.У рідкому середовищі (рані, замкнутої порожнини) УЗ виявляє фізичні та хімічні властивості. У середовищі, що зазнала впливу УЗ, створюється ефект кавітації - виникають ударні хвилі у вигляді коротких імпульсів з утворенням бульбашок кавітації. Одночасно під впливом УЗ відбувається іонізація води з утворенням Н+ і ОН-, під впливом чого в мікробній клітині припиняються окислювально-відновні процеси. УЗ-кавітацію застосовують для обробки ран.

Хімічна антисептика

Зниження ефективності антибіотиків в організмі визначається низкою умов:

Низька концентрація препарату в осередку запалення внаслідок недостатності проникнення його в тканини через низьку органотропність або розлад мікроциркуляції;

Інактивація препарату медіаторами та продуктами запалення внаслідок порушення окисно-відновних процесів, зміни рН, впливу продуктів запалення та загибелі тканин;

Вплив різних лікарських препаратів, що використовуються в комплексному лікуванні, через прямий антоганізм або порушення фармакокінетики антибіотиків.

Хімічні антисептики - Речовини, що використовуються для місцевого застосування, що дозволяють створити високу концентрацію антибактеріального препарату безпосередньо в осередку гнійного запалення. Препарати стійкіші до впливу продуктів запалення чи некрозу тканин, ніж антибіотики. Антибактеріальну активність антисептиків підвищує використання інших засобів та методів антисептики – фізичних факторів (дренування, УЗ, енергії лазера, плазми), некролітично-протеолітичних ферментів, гіпохлориту натрію, біологічних (бактеріофагів) та ін.

Позитивними якостями антисептиків є широкий антибактеріальний спектр їхньої дії, в основному бактерицидний ефект, відносно низька стійкість лікарських мікроорганізмів до них з невеликою поширеністю цих форм. Препарати відрізняє погана всмоктування, стабільність при тривалому зберіганні, рідкісні побічні дії (дратівлива та алергічна).

Похідні нітрофурану. Препарати ефективні щодо гнійної кокової флори.

Нітрофуралзастосовують у водних розчинах 1:5000 для промивання гнійних ран під час перев'язки, порожнини абсцесу та емпієми - через дренажі (наприклад, при гнійному плевриті, гнійному свищі при остеомієліті) та ін.

Фуразідінвикористовують у вигляді 0,1% розчину для тих же цілей, що й нітрофурал. Препарат можна застосовувати внутрішньовенно в дозі 300 мл.

Нітрофурал входить до складу плівкоутворювального препарату «ліфузоль» (Lifusolum),який випускається у вигляді аерозолю та застосовується для лікування поверхневих ран, опіків. Він утворює на рани захисну плівку з антимікробним ефектом. Плівка зберігається протягом 5-7 днів.

Група кислот.Для промивання ран, гнійних порожнин або гнійних нориць використовують 2-3% водний розчин борної кислоти. (Acidum boricum).

Кислота саліцилова (Acidum salicylicum) має антибактеріальну та кератолітичну дію. Застосовують як присипок, мазей, 1% і 2% спиртових розчинів.

Окислювачі.До цієї групи належать пероксид водню та перманганат калію, які при з'єднанні з органічними речовинами виділяють атомарний кисень, що має антимікробний ефект.

Розчин пероксиду водню (Solutio Hydrogeniiperoxydi diluta) застосовують у вигляді 3% водного розчину під час перев'язок, для промивання гнійних ран, гнійних нориць, емпієм, абсцесів. Рясна піна, що утворюється при промиванні, сприяє видаленню з рани гною, фібрину, некротизованих тканин. Має дезодоруючу властивість.

Сечовини пероксид (Hydroperitum) комплексний препарат пероксиду водню та сечовини. Випускається у таблетках. Для промивання ран використовують 1% розчин (100 мл води розчиняють 2 таблетки).

Калію перманганат (Kaliipermanganas) застосовують при лікуванні гнійних ран (0,1-0,5% розчин), опіків (2-5% розчин), для промивання порожнин (0,02-0,1% розчин).

Барвники.

Діамантовий зелений (Viride nitens) використовують у вигляді 1-2% спиртового або водного розчину для змащування поверхневих ран, саден, лікування гнійних захворювань шкіри.

Метилтіонінія хлорид застосовують для змащування поверхневих ран та саден (3% спиртовий розчин), лікування опіків (1-2% спиртовий розчин) та промивання гнійних порожнин (0,02% водний розчин).

Детергенти.Хлоргексидин (Chlorgexidinum) є 20% водний розчин хлоргексидину біглюконату. Для промивання ран готують розчин 1:400 для промивання порожнин тіла при гнійному запаленні - 1:1000; 1 мл 20% розчину хлоргексидину розводять відповідно в 400 і 1000 мл дистильованої води. Виражена антибактеріальна дія має бензилдиметил-миристоилами-но-пропіламоній. Спектр дії, як і у хлоргексидину, – аероби, анаероби, гриби. Застосовують 0,01% розчин.

Похідні хіноксіксаліну. Гідроксиметилхіноксіліндіоксид володіє широким спектром антибактеріальної дії: ефективний щодо кишкової та синьогнійної палички, вульгарного протею, збудників газової гангрени. Застосовують як 0,5-1% розчину.

Електрохімічні розчини. Гіпохлорит натрію 003-012%. Спектр дії – аероби, анаероби, гриби.

Способи застосування хімічних антисептиків

Місцеве застосування хіміотерапевтичних засобів: а) використання пов'язок з антисептичними препаратами при лікуванні ран та ожо-

гів; препарати можуть застосовуватися у вигляді розчинів (ними промивають рану під час перев'язки, змочують тампони), мазей і порошків; б) введення розчинів антибактеріальних препаратів у рану, закриті порожнини з подальшою аспірацією через дренажі – промивання, проточне дренування (поєднання фізичної та хімічної антисептики); прикладом комбінованого застосування фізичної та хімічної антисептики є перитонеальний діаліз при гнійному перитоніті, проточне дренування плевральної порожнини при гнійному плевриті; в) для санації черевної порожнини застосовують препарати, допустимі для внутрішньовенного введення (гідроксиметилхіноксіліндіоксид, гіпохлорит натрію, фуразидин).

Загальне застосування хіміотерапевтичних засобів включає: а) прийом антибактеріальних препаратів внутрішньо (у вигляді таблеток) з метою місцевого впливу на мікрофлору шлунково-кишкового тракту при підготовці хворих до операції на кишечнику та загальної дії на організм після всмоктування препарату в кров; б) внутрішньовенне введення деяких хіміотерапевтичних препаратів (гідроксиметилхіноксіліндіоксида, фуразідин, гіпохлориту натрію).

Біологічна антисептика

Біологічна антисептика передбачає використання засобів біологічної природи боротьби з інфекцією в людини. Діапазон препаратів надзвичайно широкий, шляхи їх застосування та спрямованість дії різні. Умовно їх можна розділити на препарати для місцевого та загального антибактеріального впливу. До групи біологічних антисептиківвідносять препарати, здатні активізувати антимікробні захисні фактори організму (імунітет). Це можуть бути як препарати специфічної прямої антимікробної дії (введення готових специфічних антитіл – засобів пасивної імунізації), так і препарати, що стимулюють вплив антитіл. Засоби імунного захисту стимулюють також неспецифічні імунні реакції – синтез в організмі клітинних факторів імунітету.

Антибіотики

Серед антибактеріальних препаратів важливе місце посідають антибіотики.Застосування в сучасних умовах становить значні труднощі, що з зміною видового складу та властивостей мікробної флори - поширенням мікроорганізмів з лікарської стійкістю. Основні збудники гнійно-запальних за-

хвороб (стафілококи та грамнегативні бактерії - кишкова паличка, протей, синьогнійна паличка та ін.) набули високого ступеня антибіотикорезистентності і навіть антибіотикозалежності внаслідок мутагенної дії антибіотиків. Серед збудників гнійно-запальних захворювань певне місце займають умовно-патогенні мікроорганізми - неспороутворюючі (неклостридіальні) анаероби та головним чином бактероїди, що відрізняються природною стійкістю до більшості антибіотиків.

Основними антибіотиками, застосування яких показано для лікування та профілактики запальних захворювань, є такі.

Пеніциліни.Одним з найактивніших є бензилпеніцилін (природний антибіотик). Напівсинтетичні пеніциліниподіляють на дві групи: 1) пеніцилінозастійкі (наприклад, оксацилін), активні щодо грампозитивної мікробної флори; їх застосовують при стафілококовій інфекції різної локалізації: пневмонії, абсцесі, емпіємі плеври, остеомієліті, абсцесі та флегмоні м'яких тканин, при ранах; 2) напівсинтетичні пеніциліни широкого спектра дії: ампіцилін, карбеніцилін; ці препарати ефективні при лікуванні опіків, ранової інфекції.

Цефалоспорини.До цієї групи належать цефазолін, цефалексин – цефалоспорини І та ІІ покоління; препарати ІІІ покоління – цефотаксим, цефтазидим, цефтріаксон; IV покоління – цефепім.

Аміноглікозиди.До них відносяться гентаміцин, канаміцин, сізоміцин, тобраміцин, амікацин (напівсинтетичний аміноглікозид). Препарати мають ото- та нефротоксичну дію.

Макроліди(еритроміцин, олеандоміцин, азитроміцин).

Тетрацикліни.Ця група включає тетрациклін, окситетрациклін, напівсинтетичні тетрацикліни – доксициклін.

Фторхінолони(Офлоксацин, ципрофлоксацин, левофлоксацин).

Карбопенеми:іміпенем+циластатин, меропенем.

Лінкозаміни(Лінкоміцин).

Глікопептиди(Ванкоміцин).

Антибіотиками широкого спектра, що впливають як на грамнегативну, так і на грампозитивну флору, є напівсинтетичні пеніциліни, цефалоспорини, аміноглікозиди, фторхінолони.

Протеолітичні ферменти

Протеолітичні ферменти належать до засобів біологічної антисептики. Вони мають здатність лізувати (розплавляти) некро-

тизовані тканини, фібрин, гній, мають протинабряковий вплив і посилюють лікувальний ефект антибіотиків. Відомі ферментні препарати тваринного походження- трипсин, хімотрипсин, рибонуклеаза, колагеназа; бактеріального -терилітин, стрептокіназа, аспераза, іруксол (мазь для ферментативного очищення ран; містить клострадилпептидазу - фермент протеолітичної дії, виділений з Clostridium histolyticum,та хлорамфенікол); рослинного -папаїн, бромелаїн.

Ферментні препарати

Ферментні препарати протеолітичної дії застосовують місцевопри лікуванні гнійних ран, трофічних виразок у вигляді розчину чи порошку. На рану або виразку, оброблену розчином пероксиду водню або нітрофуралу, накладають серветки, змочені розчином ферментів; при рясному раневом рані, що відокремлюється, засипають порошком. Деякі ферменти застосовують у мазях (іруксол, аспераза). Препарати використовують до повного очищення ран або виразок від некротизованих тканин та гною. Дози препаратів вказані в інструкції щодо їх застосування.

Розчини ферментів використовують для внутрішньопорожнинного введення:у плевральну порожнину (при гнійному плевриті), порожнину суглоба (при гнійному артриті), порожнину абсцесу. Препарати вводять шляхом пункції порожнин або через дренажні трубки після попереднього видалення гною аспірацією. При абсцесі легені, якщо він не дренується через бронхи, здійснюють пункцію абсцесу через грудну стінку з введенням у порожнину розчину ферментів. У порожнину абсцесу легкого ферменти можна доставляти через катетер чи бронхоскоп. При остеомієліті ферменти вводять у кістковомозковий канал або кісткову порожнину шляхом пункції голки або через дренажі, встановлені під час операції. Гнійні нориці промивають розчином ферментів. При гнійних захворюваннях легень проводять інгаляціїпротеолітичних ферментів за допомогою інгаляторів

При лікуванні запальних інфільтратів застосовують електрофорезферментів. Для цих цілей використовують трипсин або хімотрипсин.

Як протизапальні засоби протеолітичні ферменти (трипсин, хімотрипсин) ін'єктують внутрішньом'язовоу дозі 0,07 мг/кг.

Протеолітичні ферменти разом із розчином прокаїну можуть застосовуватися для інфільтрації тканин при початкових формах запалення або входити до складу розчинів для прокаїнових блокад.Так, при початкових формах маститу виконують ретромаммарну блокаду (див. Місцева анестезія),в ретромамарний простір вводять 70-80 мл 0,25% розчину прокаїну, 10 мг хімотрипсину або трипсину і 500 000 ОД канаміцину.

Бактеріофаги

Для боротьби з мікроорганізмами в організмі людини застосовують вірус бактерій - бактеріофаг, здатний репродукуватись у бактеріальній клітині та викликати її лізис.

Бактеріофаги відрізняються специфічною дією. Використовують антистафілококовий, антистрептококовий бактеріофаги, бактеріофаг-антиколі. Полівалентний бактеріофаг містить кілька фагів, і його застосовують, якщо збудник захворювання невідомий. Після обстеження та виявлення збудника призначають специфічний бактеріофаг. Бактеріофаги використовують для зрошення гнійних ран, інфільтрації тканин, що оточують рану, введення в гнійні порожнини через дренажі та мікроіригатори. При гнійних захворюваннях легенів бактеріофаг вводять ендотрахеально або безпосередньо в порожнину абсцесу шляхом його пункції через грудну стінку. При сепсисі специфічний бактеріофаг ін'єктують внутрішньовенно.

Імунні засоби

Для активної імунізації застосовують анатоксин. Стафілококовий анатоксинвводять підшкірно по 0,1 мл в лопаткову область, потім через кожні 2-3 дні повторюють ін'єкцію, збільшуючи дозу на 0,1 мл, поступово її доводять до 1 мл. В екстрених випадках перед операцією вводять 0,5 мл стафілококового анатоксину.

правцевий анатоксин застосовують для планової та екстреної профілактики правця. Ін'єкцію препарату в екстрених випадках поєднують з профілактичною дозою протиправцевої сироватки (див. Рани).

Для пасивної імунізації застосовують препарати, що містять антитіла до тих чи інших збудників хірургічної інфекції.

Антистафілококова гіперімуна плазма є нативною (рідкою або замороженою) плазмою крові донорів, імунізованих адсорбованим стафілококовим анатоксином. Титр антистафілококової плазми повинен бути не менше 6 ME. Застосовують плазму з розрахунку 4-6 мл/кг, вводять внутрішньовенно при важких інфекційних захворюваннях, спричинених стафілококами (сепсис, гнійний перитоніт, остеомієліт та ін). Препарат вводять одноразово або повторно залежно стану хворого.

Для цілеспрямованої імунотерапії застосовують антисинегнійну, антиколібацилярну гіперімунну плазму,містить відповідні антитіла.

Антистафілококовий γ -глобулінвиготовляють із крові донорів, імунізованих адсорбованим стафілококовим анатоксином. В 1 мл препарату міститься 20-50 ME антистафілококового антитоксину. Випускається у стерильному вигляді у запаяних ампулах. Одна лікувальна доза препарату становить 100 ME антитоксин. Застосовують антистафілококовий γ-глобулін для лікування та профілактики захворювань стафілококової природи – сепсису, перитоніту, плевриту, остеомієліту та ін. Препарат вводять внутрішньом'язово.

Імуноглобулін людський нормальний ліофілізований полівалентний імуноглобулін людини Препарат має широкий набір антитіл проти бактерій, вірусів та інших збудників. Вводять його внутрішньовенно при тяжких бактеріальних інфекціях, у тому числі при сепсисі, в дозі 0,4-1,0 г/кг щодня протягом 1-4 днів.

Протиправцевий γ -глобулінвиготовляють із крові донорів, імунізованих правцевим анатоксином. Випускається в запаяних ампулах у стерильному вигляді, в 1 мл розчину міститься 150 ME протиправцевих антитіл. Застосовують для профілактики та лікування правця. Препарат вводять внутрішньом'язово. Імунітет зберігається до 1 міс (див. розділ 10).

Протиправцева сироватка - імунна сироватка, отримана з крові тварин (коней), імунізованих правцевим анатоксином. Одна ампула сироватки містить 1500-3000 МО, профілактична доза сироватки - 3000 МО. Одноразове введення профілактичної дози сироватки захищає від правця терміном до 5 днів. Лікувальна доза сироватки перевищує профілактичну вдесятеро. У всіх випадках сироватку вводять з обережністю через небезпеку анафілактичної реакції.

Протигангренозна сироватка - імунна сироватка тварин (коней), що містить антитіла до чотирьох основних збудників газової (анаеробної) гангрени - Closotridium perfringens, Cl. oedematiens, Cl. septicum, Cl. histolyticum.Застосовують з профілактичною та лікувальною метою. З профілактичною метою сироватку вводять внутрішньом'язово, з лікувальною – внутрішньовенно з обережностями (через небезпеку алергічних реакцій).

Імуностимулюючі препарати

До імуностимулюючих препаратів, що підвищують неспецифічний імунологічний захист організму, належать продігіозан, лізоцим, левамізол.

Продігіозан -бактеріальний полісахарид, що стимулює лейкопоез, активує Т-систему імунітету, стимулює фагоцитоз. Показанням до його призначення є зниження активності фагоцитозу і пригнічення лейкопоезу, що виявляється у зменшенні кількості лімфоцитів і моноцитів, а за даними імунограми - у зниженні кількості циркулюючих у крові В-лімфоцитів. Препарат призначають по 50 мкг 4 рази на день з інтервалом 3-4 дні.

Левамізолстимулює утворення Т-лімфоцитів, фагоцитів, підвищує синтез антитіл. Препарат (6 разів на добу, через день) призначають при зменшенні кількості Т-лімфоцитів у крові, пригніченні фагоцитозу. Курсова доза становить 150 мг.

Лізоцим -природний гуморальний фактор неспецифічної реактивності діє бактерицидно. Препарат підвищує неспецифічний захист організму, посилює дію антибіотиків.

Тімуса екстракт- препарат, отриманий з вилочкової залози (тимусу) великої рогатої худоби, стимулює імунологічні процеси; - посилює реакцію клітинного імунітету та фагоцитоз, регулює кількість Т- та В-лімфоцитів. При гострих та хронічних гнійних процесах, що супроводжуються зниженням клітинного імунітету, призначають внутрішньом'язово по 10-30 мг тимусу екстракту щодня протягом 5-20 днів, для профілактики післяопераційних гнійно-запальних ускладнень перед операцією вводять протягом 5-7 днів по 10-2 . Препарат розводять ізотоничним розчином хлориду натрію безпосередньо перед ін'єкцією.

Попередження ендогенного інфікування ран

Профілактику інфікування рани під час операції з ендогенних джерел проводять різними методами. Попередити контактне інфікування допомагає ретельне дотримання техніки оперативного втручання: послідовне виконання хірургічних прийомів, ізоляція рани за допомогою серветок, рушників від можливого попадання гною при розтині інфікованого органу (наприклад, товстої кишки), черевної кишки, черевної кишки; , жовчного міхура у разі їхнього гнійного запалення і т.д. Після «брудного» етапу операції обов'язкова зміна інструментів, серветок, рукавичок, за необхідності – операційної білизни.

Щоб зменшити ризик ендогенного інфікування, планові операції відкладають для здійснення санації вогнищ інфекції в організмі.

низмі (нежить, ангіна, тонзиліт, фарингіт, простатит, аднексит, каріозні зуби, фурункулез та ін.). У випадках, коли хвороба загрожує життю хворого (кровотечі, травматичні ушкодження та ін.), виконують екстрену операцію, незважаючи на наявність осередків інфекції в організмі, - хірурги змушені йти на ризик задля врятування життя хворого. Щоб зменшити можливість перенесення мікробної флори в зону оперативного втручання, хворому призначають антибактеріальні препарати, насамперед антибіотики, безпосередньо перед операцією, під час неї та після закінчення з метою впливу на вогнище інфекції та підтримання в крові концентрації препарату, необхідної для знищення мікробів, що проникли. у кров із вогнища запалення. Цим блокується гематогенний шлях інфікування. Вживають обов'язкових заходів щодо запобігання контактному інфікуванню під час операції, якщо осередок хронічної інфекції знаходиться в зоні операції.

Велику небезпеку становлять різні інфекції для вагітних жінок, оскільки можуть внутрішньоутробно заразити плід.

Вода не повинна прийматись безпосередньо з озер або річок, коли існує високий ризик зараження. При необхідності кип'ятіть воду протягом однієї хвилини, щоб видалити криптоспоридії та інші мікроорганізми з води. Використання субмікронного водного фільтра для особистого використання може знизити ризик зараження. Пам'ятайте, що плавання може випадково ковтати воду та збільшити можливість придбання криптоспоридії, навіть у громадських басейнах. Уникайте ситуацій, в яких ви можете вдихати суперечки навколишнього середовища, особливо вологі та темні області. Гарячі ванни з гарячою водою , саунами та іншими спільними ванними кімнатами не рекомендуються загалом . Бактерії та інші мікроорганізми процвітають у теплій воді. Однак, якщо імуносупресивна людина впевнена, що ванна дезінфікується регулярно відповідно до рекомендацій, немає протипоказань, які перешкоджають її використанню. Обвалення не повинно практикуватися через ризики зараження, пов'язані з впливом гуано. Виїзд за кордон: для людей з дуже високим рівнем ризику інфікування цей ризик збільшується під час поїздок до країн, що розвиваються.

• джерело інфекції, наприклад, хвора людина;
• механізм передачі патогену - горизонтальний, вертикальний, артифікаційний чи штучний;
• сприйнятливий організм.

• бацилоносії - це пацієнти або медичні працівники, рідше тварини;
• пацієнти з гнійно-запальними захворюваннями;
• ятрогенні інфекції, коли інфікування походить від медперсоналу в стінах лікарні.

Шляхи зараження екзогенною інфекцією

Горизонтальні

• Повітряно-краплинна. Найпоширеніший спосіб зараження. З повітряного середовища макроскопічні «істоти» потрапляють усередину здорової людини. Достатньо опинитися біля джерела зараження – хворої людини чи вдихнути заражене повітря. Таким шляхом поширюється, кір, та низка інших захворювань.
• Повітряно-пилова. Цей тип уражає патогенних агентів, які зберігають свої хвороботворні властивості кілька днів. При чханні та кашлі вони потрапляють у повітря, потім осідають на частинках пилу та проникають в організм. Це патогенні мікроорганізми таких хвороб, як дифтерія, скарлатина, туберкульоз.
• Фекально-оральна.Збудники хвороб «брудних рук» - кишкової інфекції, гельмінтозу та сальмонельозу. Тут виділяють два способи. Перший - аліментарний спосіб зараження, коли патогени селяться на продуктах харчування, потрапляючи на них із ґрунту, відходів життєдіяльності тварин. Другий – водний спосіб розповсюдження. Випивши сирої води, можна захворіти на холеру або черевний тиф.
• Контактно-побутова. Виділяють прямий та непрямий шляхи зараження. При прямій передачі людина заражається за безпосереднього контакту з хворим через слину, поцілунок, секс. Це - гонорея, сифіліс, а також бешиха, герпес, короста. За непрямого способу патогени осідають на різних побутових речах, тобто носій вірусу, наприклад, витерся рушником або взяв склянку і залишив частину своїх «хвороботворних друзів» на них. Здорова людина скористалася цими ж предметами і через якийсь час захворіла на дизентерію або тиф.
• Трансмісивна. Інфікування відбувається внаслідок взаємодії людини із переносниками захворювань. При неспецифічному шляху носіями є комахи – мухи та таргани, які переносять на своїх лапках патогенні мікроорганізми, які потрапляють на їжу чи напої. Мухи можуть занести паличку черевного тифу, вірус гепатиту A або збудників кишкових інфекцій. За специфічний шлях зараження «відповідають» комахи, які переносять лише один вид захворювання. Комарі є переносниками малярії, кліщі – енцефаліту, блохи – чуми, а воші – висипного тифу.

Вертикальні

• гепатит B;
• кіром;
• вітрянкою;
• бактеріями - стафілококами та стрептококами.

Ті, хто вирішує вирушити в подорож, повинні уникати продуктів харчування та напоїв, які можуть бути заражені, зокрема сирих фруктів та овочів, сирих або недоварених м'ясних продуктів та морепродуктів, водопровідної води, льоду, зробленого водопровідною водою, молоком та водою. непастеризовані молочні продукти та продукти, які пропонують вуличні торговці. Серед продуктів та напоїв, які загалом безпечні з погляду інфекцій, дуже гарячі продукти, фрукти, яким сам мандрівник видаляє шкіру чи шкірку, напої у пляшках, каву та гарячий чай, пиво, вино та воду, коли його кип'ятять протягом однієї хвилини. . Хоча обробка води йодом або хлором не така ефективна, як кипляча вода, цей метод можна використовувати, коли неможливо кип'ятити воду. Як правило, мандрівникам не рекомендуються профілактичні протимікробні засоби, але ваш лікар може порадити вам приймати певні ліки у вас. Ефективність цих агентів залежить від місцевих протимікробних властивостей, які рідко відомі. Проконсультуйтеся з рішеннями вашого лікаря, виходячи з рівня ризику зараження, а також у регіоні та тривалості поїздки. Якщо ви почуваєтеся добре, ви можете очистити пил, зачистити, очистити вікна, помити підлогу та чистити ванні кімнати звичайним способом. Однак уникайте очищення або видалення пилу з місць, де може бути знято багато опадів. Використовуйте здоровий глузд і уникайте областей прибирання, які не були порушені роками. В цілому, слід уникати будівельних або ремонтних ділянок через можливість грибів або плісняви, розкиданих у пилу. Якщо цього не можна уникнути, людина з ослабленим імунітетом може знизити ризик зараження за допомогою спеціального респіратора, який фільтрує частки, щільно прикріплені до обличчя. Надягніть рукавички для миття сильно забруднених областей та туалетів. . Є кілька випадків, коли маска підходить, наприклад, якщо людина, яка страждає на імунодепресію, повинна увійти в площу, що будується або оновлена, або піддаватися рясним викидам пилу або сміття.

Інфікування дитини може статися також під час пологів та в період лактації, тому ВІЛ-інфікованим та зараженим сифілісом жінкам суворо заборонено годувати дітей грудним молоком з перших днів їхнього життя.

Штучні чи артифікаційні

• гепатит B, C, D;
• токсоплазмоз;
• малярія;
• сифіліс;
• Лістеріоз.

Існує два різновиди такого джерела інфекції – гемоконтактний та інгаляційний.

Крім того, якщо необхідно мати тісний контакт з іншими людьми, які страждають на респіраторну інфекцію, маска знижує ризик зараження інфекцією. Наркотики, які ваш лікар чи постачальник медичних послуг можуть виписати чи рекомендувати вам.

• Філграстим Пегфілграстім Сарграст.
• Сульфаметоксазол - триметоприм Ациколовір ® Флуконазол ® Інтраконазол ®.

Коли зателефонувати до свого лікаря або постачальника медичних послуг через можливу інфекцію. Зателефонуйте негайно, якщо у вас є.

• Озноб чи тремор.
• Раптова поява нового болю без пояснення причин.

До гемоконтактної відносять такі способи зараження:

• Трансфузійний. Інфікування відбувається при переливанні крові чи її компонентів. Це може статися через неякісне обстеження донора, повторне використання одноразових інструментів, відсутність або неправильну процедуру стерилізації багаторазових хірургічних інструментів, порушення правил зберігання біологічного матеріалу - крові та її компонентів.
• Трансплантаційний. Зараження під час пересадки донорських органів.
• Парентеральний. Мікроорганізми потрапляють до організму при пошкодженні цілісності шкірних покривів або слизових під час хірургічного втручання, ін'єкцій чи діагностичних заходів. Зараження може статися у разі використання нестерильних хірургічних інструментів, повторного застосування одноразових інструментів при роботі інфікованого фахівця без рукавичок, маски.

Кров у сечі. Необхідно мочитися частіше, ніж зазвичай.

• Біль в горлі.
• Болячки у роті.
• Біле покриття на ротах, особливо мовою.
• Ознаки інфекції сечового міхура.
• Спалювання при сечовипусканні.

Основним симптомом інфекції є інтоксикація організму, яка проявляється у вигляді:

• слабкості;
• запаморочення;
• нудоти;
• блювання;
• висипки;
• підвищеної температури тіла;
• течії з носа.

Симптоми змінюються залежно від виду збудника, але якщо від одних інфекцій, що передаються повітряно-краплинним, фекально-оральним або контактним шляхом, можна постаратися захиститися самостійно, то при штучному зараженні від людини нічого не залежить.

Ви хочете пройти тест на гонорею? Знайти Центр Здоров'я →

Але якщо ви бачите ознаки гонореї, негайно протестуйте її. Тут ми пояснимо, на що звернути увагу.

Гонорея не завжди має симптоми

Профілактика

• під час епідемій вірусних інфекцій уникають великого скупчення народу;
• носять багатошарову марлеву пов'язку, яку необхідно часто міняти – кожні 2 години;
• тимчасово відмовляються по можливості від спілкування з людьми, які мають ознаки захворювання;
• у приміщенні знезаражують повітря за допомогою ультрафіолетових ламп або інших приладів дезінфекції (навіть щоденне провітрювання зменшує кількість мікробів у повітрі);
• прийшовши з вулиці, миють руки з милом, обов'язково споліскують обличчя, а після походу до поліклініки чи лікарні промивають носа.

• не користуються чужими засобами особистої гігієни;
• у приміщенні проводять вологе прибирання;
• якщо є будинки хворий, то в місцях загального користування для миття підлоги, туалету, ванної кімнати та кухні використовують антисептик;
• хвору людину намагаються на час хвороби ізолювати.

Гонорея може викликати серйозніші проблеми зі здоров'ям і навіть викликати безплідність, якщо ви її не лікуєте. Однак його зазвичай легко вилікувати за допомогою ліків. Більшість людей із піхвою, які отримують гонорею, не мають симптомів. Якщо вони виявляють симптоми гонореї, вони з'являються приблизно за тиждень після зараження цією інфекцією.

Аномальні виділення з піхви, які можуть бути жовтуватими або кривавими. Кровотеча між менструальними періодами. Люди з пенісом більше шансів мати симптоми, якщо вони отримають гонорею. Зазвичай, симптоми з'являються через тиждень після зараження інфекцією.

• миють руки - до та після їжі, при приготуванні їжі, після туалету та вулиці;

  Погладили домашню тварину чи пограли з нею? Не забудьте промити руки з милом!

• ретельно під проточною водою промивають овочі та фрукти, для кращого ефекту скористайтеся м'якою губкою або щіткою;
• страви доводять до повної готовності, уникаючи не прожарене м'ясо, біфштекси з кров'ю;
• воду і молоко піддають кип'ятінню, оскільки за високої температури основна маса патогенної мікрофлори гине.

Слідкуйте за домашніми тваринами – використовуйте протиблошині нашийники та регулярно мийте своїх вихованців шампунями проти бліх.

Жовтий, білий або зелений виділення з пеніса Біль або печіння при сечовипусканні Біль або припухлість у яєчках Гонорея може також інфікувати анус, якщо у вас анальний секс, або ви можете поширити інфекцію на задній прохід з іншої частини тіла. Анальна гонорея зазвичай не виявляє симптомів. Однак ознаки гонореї в анусі можуть містити.

Сверблячка в анусі або навколо анусу Вивантаження з анусу Біль у дефекації. . Інфекції у горлі, викликані гонореєю, також зазвичай не викликають симптомів. Якщо з'являються симптоми, це просто біль у горлі. Якщо у вас або ваших сексуальних партнерів є які-небудь з цих симптомів, зверніться до медсестри, лікаря або.

Які фактори, крім здатності імунної системи протистояти атаці вірусів, ще підвищують ймовірність зараження, невідомо точно. Наприклад, якщо з чотирьох дітей, які грають разом в однакових умовах, один хворий на стрептококову інфекцію, то заразитися можуть не всі три, а тільки два. Третій має шанс стати носієм інфекції, яка проявиться чи не проявиться у його організмі надалі. Імовірність зараження, одним словом, визначається антибактеріальною стійкістю та типоспецифічністю імунітету.

Біологічна війна – це використання мікробіологічних засобів для ворожих цілей. Неясно, чи є інші країни чи дисидентські групи для біологічної війни. З різних причин експерти вважають використання біологічних агентів малоймовірним у формальних війнах. Однак, біологічні агенти вважаються деякими людьми ідеальною зброєю для терористів. Ці агенти можуть надаватися підпільно та можуть мати затримані ефекти, дозволяючи користувачу залишатися непоміченим.

Потенційні біологічні агенти включають карбункул, ботулінічний токсин, бруцельоз, вірус геморагічної лихоманки, чуму, віспу та туляремію. Кожен із них потенційно смертельний і, за винятком карбункулу, ботулінічного токсину та туляремії, може передаватися від однієї людини іншій. Пряма передача від людини людині бруцельозу вкрай рідкісна.

Інфекція одного типу в організмах різних людей може виявитися по-різному. У однієї дитини це буде риніт, у іншої – ангіна, у третьої – отит. Боротьба зі стрептококовою інфекцією ускладнюється тим, що багато практичних штами не реагують на обробку гарячою водою середовища їх проживання. Саме тому миття іграшок та посуду у теплій воді, навіть із застосуванням хімічних засобів, не дає позитивного результату у знищенні бактерій. При температурі 70 градусів мікроби також продовжують жити, проте 90% їх гине за одну годину. Вплив негативними температурами також не дасть ефекту: при заморожуванні крові в ній можуть кілька місяців жити стрептококи. Ефективним може бути вплив сильнодіючими дезінфікуючими засобами.

Суперечки сибірки відносно легко підготуватися і, на відміну більшості інших агентів, можуть передаватися повітрям, створюючи можливість поширення літаками. Теоретично, 1 кг сибірки може вбити до 1000 людина, хоча технічні труднощі під час приготування спір як досить тонкого порошку можуть обмежити кількість смертей частку цього числа.

Більшість людей були заражені спорами сибірки без розвитку захворювання, можливо, через широке використання антибіотика ципрофлоксацину. Однак виник надзвичайний суспільний занепокоєння з приводу цих інцидентів. Кількість помилкових загроз сибірки була дуже великою. Ще більше помилкових тривог, як чутки, так і повідомлення тривожних громадян, які плутали нешкідливі матеріали з сибіркою, були зареєстровані після нападу карбункулу.

Зараження здорових людей може статися лише при контакті з хворою людиною. Жодними іншими живими організмами ці бактерії не передаються. Заразити може як простий носій вірусів, і вже хвора людина. Бактерії легко поширюються у повітрі при спілкуванні з хворим, потрапляють та зберігають свою активність на іграшках, посуді, інших предметах. Навіть у висохлому стані бактерії продовжують перебувати в повітрі або на поверхнях і при попаданні в організм починають поразку.

Бактерію було запроваджено релігійним культом, який намагався вплинути на результати місцевих виборів. Ніхто не помер, і вибори не постраждали. Курячий суп, підсмажені скибочки, фрукти, тільки рідини: у нас є свій власний спосіб впоратися з розладом холоду, грипу чи шлунка. Але тепер вчені розуміють, що насправді існує зв'язок між їжею, яку ми вживаємо, коли ми хворіємо, і часом відновлення, і що, залежно від інфекції, краще їсти чи взагалі не їсти.

Дослідження, яке щойно було проведено на мишах, показало, що прийом більшої кількості їжі при боротьбі з вірусною інфекцією, такою як застуда та грип, може допомогти прискорити одужання, але, з іншого боку, якщо ми боротимемося з бактеріальною інфекцією, як харчове отруєння, споживання їжі може серйозно погіршити ситуацію.

Найбільш сприйнятливими до стрептококів вважаються маленькі діти, які ще не привчені до правил особистої гігієни та постійного миття рук. Однак не можна сказати, що в організмі людини дорослої бактерії не оселяться. Шанси підхопити інфекцію знижуються лише після сорокарічного віку. Загострення та зростання захворюваності відбуваються в осінньо-зимовий час.

Коли тварини заражені, вони перестають їсти, що переключає метаболізм на голод. Питання, чи є переваги від цього, і це також важливо для людей? – провідний дослідник Руслан Майжов. Перш ніж перейти до результатів опитування, спочатку познайомимося з тим, як наше тіло реагує на різні інфекції. Ми здебільшого знаємо два типи інфекцій: бактеріальні та вірусні.

Бактеріальні інфекції, які включають бронхіт та пневмонію, викликані одноклітинними організмами, які можуть розвиватися та розмножуватися у наших тілах. На щастя, більшість бактеріальних інфекцій піддаються лікуванню антибіотиками, щоб обмежити їхні колонії. Вірусні інфекції, такі як грип або холод, з іншого боку, не є саморозмножуються, як бактерії. Натомість вони беруть наші клітини і змушують їх виробляти більше копій вірусу і тому поширюються по всьому тілу. Вірусні інфекції зазвичай не відповідають на лікування антибіотиками, але деякі противірусні агенти можуть запобігти їх поширенню в інтактних клітинах. Коли ми заражені шкідливими бактеріями чи вірусами, наша імунна система миттєво активується, першою захисною відповіддю є посилення запальних процесів у різних сферах тіла.

Для застосування та життєдіяльності в організмі людини стрептококи вибирають поверхню мигдаликів, а також лімфоїдну тканину на органах дихання. Бувають випадки, але набагато рідше, коли інфекція в організмі людини з'являється через шкіру, де є ранки і тріщини, опіки або попрілості. У тому місці, де стрептококи впроваджуються, утворюється первинне вогнище, звідки і бере свій початок запальний процес. З нього надалі мікроби потрапляють і до інших тканин внутрішніх органів, викликаючи сильну загальну інтоксикацію. Мікроби ведуть активну життєдіяльність, розмножуються, виділяють токсичні продукти та компоненти, що утворюються внаслідок розпаду білка. Часто стрептококова інфекція переходить у некроз - гнійне пошкодження тканин з подальшим відмиранням.

Стрептококова інфекція має властивість з напрочуд швидкою швидкістю поширюватися в тканинах та органах. На початкових стадіях їх впливу розвиваються флегмона та періаденіт. При подальшому попаданні мікробів у євстахієві труби запалення локалізується в середньому вусі, через що починається отит, синусит, етмоїдит, мастоїдит. Запущена стадія захворювання може закінчитися утворенням гнійних метастаз та септикопіємією. Своєчасно розпочате та грамотно призначене лікування є запорукою того, що поширення інфекції можна зупинити та запобігти початку незворотних патологічних змін.

Розпізнати стрептококову інфекцію самостійно неможливо. Для цього необхідні клінічні обстеження та аналізи, щоб лікарі мали можливість виділити в групі бактерій, що є в організмі, саме стрептококів. Чим раніше хворий звертається до лікаря, тим вища ймовірність того, що діагностика буде проведена правильно.

Взаємини ендогенних та екзогенних онкорнавірусів

Постійна присутність вірогенів у нормальних клітинах, природно, створює умови для виникнення як рекомбінантних та гібридних вірусних частинок, так і фенотипного змішування ендогенних вірусів з екзогенними вірусами (інфекційними та онкогенними). Така певною мірою «штучна» гібридизація може призводити до появи нових типів онкогенних вірусів (особливо при гібридизації онкогенних вірусів з ксенотропними ендогенними вірусами) з дуже широким діапазоном бластомогенного впливу різні види і навіть класи тварин.

До теперішнього часу встановлено утворення справжніх рекомбінантних геномів ендогенних та екзогенних онкорнавірусів птахів. Генетичні рекомбінації відбувалися також між chf та RSV при використанні ts-мутантів цього вірусу. Подібні сполуки геномів могли переходити у стабільні форми шляхом утворення провірусу у наступному циклі реплікації.

Зафіксовано також численні факти виділення вірусів зі зміненим спектром патогенності, зокрема гетерологічних клітин (щури, хом'яка), трансформованих різними штамами MSV.

Процес трансформації в таких системах клітин, як правило, призводить до активації ендогенного вірусу та створення гібридних онкогенних вірусів (псевдотипів) ендогенного вірусу та MSV. Геноми таким чином виниклих гібридних частинок містять зазвичай ділянку (або ділянки), комплементарні клітини (щур або хом'яків). Причому іноді геноми гібридів можуть містити кілька гетерологічних ділянок.

Наприклад, РНК MSV — Ki та MSV(RaLV) мають послідовності основ як ендогенного вірусу мишей, так і ендогенного вірусу щурів, а віруси, ізольовані з пухлин хом'яків, індукованих MSV — Н, несуть у своєму геномі ділянки, комплементарні ендогенним вірусам мишей. хом'яків. З пухлин, індукованих канцерогенними речовинами, виділялися віруси, геном яких містив послідовності, комплементарні лише ендогенним вірусам відповідних видів тварин (Levy, 1976).

Шляхом спільного культивування клітин павіанів і мавп Erythrocebus patas з клітинами норок, трансформованими вірусом саркоми мишей Кірстен, та подальшої обробки змішаної культури 5'-бром-лезоксиуридином виділено два нові ізоляти С-типу, позначених PP-IR та EP-IR ( ., 1976).

Геном вірусів представлений РНК, яка була частково гомологічною ендогенним вірусам С-типу мишей та щурів і Ki - MSV. Крім того, у складі РНК PP-IR та EP-IR знаходяться послідовності, ідентичні послідовностям РНК ендогенного вірусу С-типу павіанів.

Обидва віруси виявилися здатними репродукуватися в клітинах кішок, коней і норок, лише трансформованих Ki-MSV, зберігаючи при цьому генетично стабільні антигенні властивості та геномні послідовності протягом року культивування. Вони також експресували білки, споріднені з вірусами С-типу як гризунів, так і кішок.

Як основний структурний компонент обидва віруси містили р30, який імунологічно був найбільш споріднений з р30 FeLV.

Peвертаза обох вірусів, хоча частково аитигенно споріднена з ферментом вірусів С-типу мишей і щурів, проте відрізнялася від зворотної транскриптази описаних раніше вірусів.

Припускають, що ізоляти є генетичними рекомбінантами, що утворилися між геномом ендогенного вірусу С-типу приматів і послідовностями Ki-MSV, присутніми в клітинах норок, трансформованих цим вірусом.

Взаємини ендогенних та екзогенних вірусів можуть бути дуже різноманітними. Численні та добре відомі дані про комплементацію різними ендогенними вірусами різних дефектних онкогенних вірусів, внаслідок чого останні могли завершувати свій репродуктивний цикл. Наприклад, екотропні ендогенні віруси щурів (RaLV - SD і RaLV - F) можуть "рятувати" MSV з клітин, непродуктивно трансформованих MSV - Ki (Rasheed et al., 1976).

Водночас присутність у геномі нормальної клітини ендогенного вірусу може блокувати інтеграцію та навіть екзогенну інфекцію цієї клітини близьким, але патогенним онкорнавірусом.

На прикладі різних штамів MTV і лейкозних вірусів мишей показано, що ендогенний вірус перешкоджає інтеграції патогенних варіантів цих вірусів в геном термінальних клітин і тим самим запобігає вертикальній трансмісії онкогенної генетичної інформації, тобто спадкове закріплення пухлинної хвороби і можливу

Згодом виявилося, що у разі всіх відомих патогенних природних штамів саркомно-лейкозних комплексів ссавців (мишей, кішок, мавп та ін.) вертикальна передача патогенного штаму не мала місця, тобто термінальні клітини були надійно захищені не тільки від інтеграції, але від екзогенної інфекції цими вірусами (Levy, 1976).

Механізм цього захисту поки що не відомий. Припускають, що один із можливих варіантів — наявність строго певного локусу в термінальних клітинах для інтеграції вірогена. Якщо він зайнятий, то суперінфекція іншим онкорнавірусом виключена.

«Механізми вірусного онкогенезу»,
А.І.Агєєнко

У популяції ендогенного онкорнавірусу мишей MuLV, індукованого в клітинах BALB/3T3 5-йоддез-оксиуридином, був присутній як ксенотропний вірус, так і екотропний вірус N-типу (Laprevotte et al., 1977). При інфекції щурів клітин NRK ксенотропним вірусом утворювалися фокуси морфологічної трансформації з веретеноподібними клітинами. Екотропний MuLV викликав фокуси трансформації із округлими клітинами. Ці властивості трансформованих клітин зберігалися при подальшому пасуванні.

Вкрай важливо, що поки що немає прямих доказів на користь вертикальної передачі термінальними клітинами дефектних або недефектних геномів цих вірусів, хоча sarc-специфічні послідовності виявлені в нормальних клітинах деяких видів птахів і мишей (Stehelin, 1976; Wang Lu Hai et al., 1976; Frankel; , Fischinger, 1976, 1977). Є підстави припускати, що sarc-гени присутні й у нормальних клітинах щурів, у…

Таким чином, на підставі зіставлення експериментальних даних можна припускати, що в нормальних клітинах онкогени відсутні, принаймні в тій формі, в якій вони знаходяться в геномі екзогенних або ендогенних онкорнавірусів. Отже, поки що не отримано доказів центрального постулату гіпотези Хюбнера — Тодаро, згідно з яким онкоген постійно присутній у кожній нормальній клітині. Тоді що ж...

Особливий інтерес представляє спільність певних білків клітинної поверхні та ендогенних вірусів, які, з одного боку, є нормальними компонентами клітини, з другого — входять до складу віріонних білків, тобто є вірусними білками. До таких білків, наприклад, відноситься так званий антиген-Gix, який є типоспецифічним глікопротеїдом gp69/71 ендогенного вірусу Гросса та інших екотропних вірусів і локалізований на білках.

До вивчення імунологічних реакцій організму на білкові продукти генів ендогенних вірусів почали лише 2 — 3 роки тому. Разом з тим, цей аспект проблеми ендогенних вірусів має першорядне значення, оскільки вже початкові дослідження показали, що імунореактивність, ймовірно, може бути одним із механізмів регуляції експресії вірогенів. Принципово важливим як теорії, так і для…

Болючий агент потрапляє до нас в організм кількома шляхами. Перерахуємо їх:

1. По повітрю. Повітряний шлях передачі інфекції – найпоширеніший. Він характерний для вірусів та бактерій. Мікроби або вільно циркулюють у повітряних масах, або прикріплені до крихітних частинок пилу.
2. Краплинно. При чханні, кашлі, розмові людина виділяє мільярди крапель слини та носового слизу. У цих краплях і пересуваються інфекційні збудники.

При поширенні вірусних епідемічних захворювань (ГРВІ, грип) відбувається комбінація цих двох шляхів інфікування.

1. Контактно. Збудник знаходиться на шкірі хворої людини або на слизових оболонках. При контакті хворого на предмети побуту чи здоровою людиною він передає інфекційний агент, який викликає зараження. Контактний шлях передачі у всіх статевих інфекцій (сифіліс, гонорея, ВІЛ), деяких вірусних захворювань (інфекційний мононуклеоз), у грибкових хвороб (оніхомікоз стоп).
2. Через укуси комах. Такі хвороби, як чума, висипний тиф, малярія, бореліоз мають трансмісивний шлях передачі. Хвороботворний агент живе і розмножується в шлунково-кишковому тракті комах (блохи, воші, комарі, кліщі) та при укусі зі слиною потрапляє людині в кров.
3. Через рота. Фекально-оральний спосіб передачі полягає у поїданні забрудненої їжі, води. Всі харчові інфекції (холера, сальмонельоз, дизентерія, ротавірус) мають такий спосіб передачі.

Профілактика

Шляхи передачі інфекції вивчає епідеміологія. Медики повинні мати таку інформацію, щоб грамотно здійснювати профілактику захворювань.

Як засоби захисту від повітряно-краплинних інфекцій можна використовувати маски. Вони щорічно доводять свою ефективність при грипозних епідеміях. Краще використовувати чотиришарову марлеву пов'язку, яку слід міняти кожні 2-3 години. Щоб уберегти себе від повітряно-краплинних інфекцій, варто уникати місць масового скупчення людей. Після вулиці необхідно мити руки з милом (на руках можуть залишатися пилові частинки, слина та слиз), вмивати обличчя, промивати ніс фізіологічним розчином.

Глибоке промивання носа вважається єдиним надійним заходом профілактики респіраторних інфекцій.

Профілактика контактних захворювань полягає у використанні засобів захисту під час статевого акту, проведення ретельної дезінфекції приміщень після спалахів контактних інфекцій, дотримання обережності при користуванні громадськими лазнями, туалетами.

Щоб запобігти трансмісивним інфекціям достатньо уникати укусів комах. Хоча це складно навіть у міських умовах. Для цього використовують спеціальні репеленти, захисний одяг. У місцях поширення малярії проводять осушення боліт, обробку лісових ділянок інсектицидами. У спекотних країнах використовую спеціальні протикомарині сітки на вікна, які обробляються спеціальним розчином, що відлякує. Кліщі таяться у високій траві, тому в місцях громадського відпочинку часто працюють газонокосильники.